IX. Санкции за нарушение антидопинговых правил в индивидуальных видах спорта ПРИКАЗ Минспорттуризма РФ от 13.04.2011 N 307 “ОБ УТВЕРЖДЕНИИ ОБЩЕРОССИЙСКИХ АНТИДОПИНГОВЫХ ПРАВИЛ”

Министерство здравоохранения Ставропольского края                    Государственное бюджетное образовательное учреждение                           среднего профессионального образования Ставропольского края                                                      «Кисловодский медицинский колледж»

                                                           Рассмотрено и утверждено на заседании

                                                           хирургической ЦМК «___»______2021г.      

                                                           председатель ЦМК________ Горячева Л.В.              

МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА

к занятию по теме  «Асептика и антисептика»

для  специальности  31.02.01 «Лечебное дело»

СОСТАВИЛА:

преподаватель высшей

квалификационной категории

хирургии Оболенская Л.В.    

город-курорт  Кисловодск  

2021-2021 уч. год

СОДЕРЖАНИЕ:  

I. Введение

II. Памятка  для студента

III. Стандарт

IV. Теоретический материал к теме по вопросам:

1. Асептика

1. . Методы стерилизации
2. . Профилактика СПИДа в хирургии  

2. Гигиенические требования, предъявляемые к хирургическому отделению

1. .  Профилактика имплантационной инфекции
2. . Подготовка рук к операции
3. . Подготовка операционного поля
4. . Стерилизация перчаток
5. . Гигиена медицинского персонала
6. . Роль хирургической медицинской сестры а соблюдении санитарно-эпидемиологического режима
7. . Хирургические манипуляции в асептических условиях

3. Антисептика

1. . Виды антисептики

5. Вопросы и задания для самоконтроля

6. Тесты

7. Ответы к тестам

8. Наглядные пособия

9. Литература

ВВЕДЕНИЕ

Данная методическая разработка предназначена для реализации следующей задачи – дать студентам достаточный объём знаний, подготовить их к выполнению функциональных обязанностей медицинских работников в сфере обеспечения инфекционной безопасности пациента и персонала (соблюдения санитарно-гигиенического и противоэпидемического режима).   Цель данной работы – сформировать базовые умения практического и профессионального владения методами асептики и антисептики, совершенствовать полученные умения во всех видах медицинской деятельности с упором на хирургический профиль, укрепить мотивацию самостоятельного изучения и дальнейшего совершенствования в области изучения хирургии.  Преподавание хирургии в медицинском колледже является одним из базовых, основополагающих предметов, связанных с формированием и получением знаний по будущей специальности студента. Разработка по теме «Асептика и антисептика» предназначена для студентов  отделений «Лечебное дело» для самостоятельного изучения этой темы.   Выбор темы связан с тем, что студенты медицинских колледжей должны уметь: обеспечить высокий уровень профессионального общения;  подготовить рабочее место, рационально организовать свой труд в лечебно-профилактических учреждениях; обеспечить безопасную среду для пациента и персонала; выполнять стандартизированные сестринские технологии (манипуляции и мероприятия). Раздел «Проверь себя» необходим для закрепления и контроля темы. В пособии даны эталоны ответов для использования самоконтроля. Методическая разработка составлена в соответствии с требованиями федерального государственного образовательного стандарта среднего профессионального образования по специальности 31.02.01 Лечебное дело.

Оболенская Лариса Васильевна  

Методическая разработка по теме : «Асептика и антисептика»

ля специальностей  31.02.01 «Лечебное дело»  

РЕЦЕНЗЕНТ  

Преподаватель высшей квалификационной категории  хирургии Горячева Л.В.

Представленная методическая разработка  составлена в соответствии с требованиями федерального государственного образовательного стандарта среднего профессионального образования к уровню подготовки студентов медицинских колледжей по дисциплине «Хирургия». Рецензируемая методическая разработка в рамках учебной программы по дисциплине «Хирургия» рекомендована для применения в медицинских училищах и колледжах.  

РЕЦЕНЗИЯ

на работу  преподавателя высшей квалификационной категории по хирургии ГБОУ СПО СК « Кисловодский медицинский колледж»  

Оболенской Ларисы Васильевны

Данная методическая разработка  составлена в соответствии с требованиями федерального государственного образовательного стандарта среднего профессионального образования для средних специальных учебных заведений и программой. Разработка по теме «Асептика и антисептика» предназначена для студентов  отделения «Лечебное дело» для самостоятельного изучения этой темы. Данные в методической разработке задания позволяют выявить у  студентов уровень и объём овладения знаний. В разработке в полной мере охватывается обширный круг исследуемых вопросов. Задания к текстам помогают проверить глубину и качество усвоения материала, а тестовые задания позволяют определить степень и прочность усвоения знаний. Задания и тексты подобраны с учётом особенностей обучения предмету хирургии, связанным с будущей профессиональной деятельностью студента. Цель данной разработки заложить прочные основы практического владения профессиональными навыками и умениями  в сфере обеспечения инфекционной безопасности пациента и персонала (соблюдения санитарно-гигиенического и противоэпидемического режима) – достигнута. В конце разработки даны ключи ко всем тестовым заданиям, которые помогут как студенту, так и преподавателю проверить правильность ответа и обратить внимание преподавателя и самого студента на задания, которые вызывают трудности.          Рецензируемая методическая разработка в рамках учебной программы по дисциплине «Хирургия» рекомендована для изучения в медицинских училищах и колледжах.  

Преподаватель высшей квалификационной категории

по хирургии ГБОУ СПО «КМК» Горячева Л.В.

ПАМЯТКА ДЛЯ СТУДЕНТА

При изучении данного пособия студентам рекомендуется:  

1. Ознакомиться с названием темы, содержанием, стандартом.

2. Прочитать и изучить теоретический материал.

3. Прочитать и изучить алгоритмы действий в определенных ситуациях, выполнить некоторые манипуляции самому.

4. Проверить свои знания, ответив на контрольные вопросы, выполнить тест.

5. Сверить свои ответы с эталонами.

6. Ознакомиться с наглядными пособиями, использованными для изучения данной темы.

8. При необходимости ещё раз повторить материал данного пособия.  

СТАНДАРТ  ПО  ТЕМЕ:

СТУДЕНТ ДОЛЖЕН ЗНАТЬ:  

1. Определение и современные методы асептики и антисептики.

2. Виды хирургической инфекции.

3. Мероприятия по обеспечению асептики и антисептики. Виды и способы дезинфекции и стерилизации.  

СТУДЕНТ ДОЛЖЕН УМЕТЬ:  

1. Осуществлять стерилизацию хирургических инструментов, перчаток, операционной одежды, белья, перевязочного материала.

2. Осуществлять хирургическую дезинфекцию рук различными способами.

3. Подготавливать и укладывать в бикс перевязочный материал, белье и перчатки к различным видам операций.

4.  Активно участвовать в профессиональном общении, демонстрируя свои практические навыки и умения.

СТУДЕНТ ДОЛЖЕН ИМЕТЬ ПРЕДСТАВЛЕНИЕ:  

1. О принципах работы основных структурных подразделений хирургического стационара.

2. О функциональных обязанностях медицинского персонала, входящего в структуру подразделения хирургического стационара лечебно-профилактического учреждения.

1. АСЕПТИКА

Асептика (а – без, septicus – гниение) – комплекс мероприятий, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операционную рану и организм больного. Основной закон асептики – все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно. В 1885 году русский хирург М.С. Субботин впервые оборудовал операционную, в которой работа осуществлялась стерильным перевязочным материалом. Т. Бильрот ввел форму для врачей хирургических отделений в виде белого халата и шапочки. В последующие годы Э. Бергман, используя открытия Л. Пастера, детально разработал методы асептики, положив начало современным направлениям асептики. Традиционно выделяются два источника инфицирования: экзогенный и эндогенный. Экзогенной считается инфекция, попадающая в рану из внешней среды.

Выделяют следующие пути распространения экзогенной инфекции:

• воздушно-капельный (инфекция переносимая воздушными потоками — пыль, капли жидкости);

• контактный (инфекция переносится с предметами, соприкасавшимися с раневой поверхностью – руки хирурга, инструменты, перевязочный материал и др.);

• имплантационный (инфекция, попавшая в рану с шовным и пластическим материалом, дренажами, протезами).

Эндогенной считается инфекция, находящаяся внутри организма (инфекция верхних дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта, мочевыводящих путей и др.) или на его покровах – аутоинфекция, которая может попасть в инфекционный очаг по лимфатическим или кровеносным сосудам, а также контактным путем.

Методы профилактики воздушно-капельной инфекции 

К методам борьбы и профилактики воздушно-капельной инфекции можно отнести соблюдение медицинским персоналом и больными правил личной гигиены, ношение медицинских масок, организацию адекватной вентиляции, применение бактерицидных ламп.

Медицинские маски используются для уменьшения выделения при дыхании капель секрета из носоглотки и ротовой полости в окружающую среду.

В настоящее время широко используют только фильтрующие типы масок. Наиболее часто используют марлевые маски, при этом их эффективность напрямую зависит от количества слоев:

– трехслойные марлевые маски, полностью закрывающие нос и рот, задерживают до 70% выдыхаемых микроорганизмов;

– четырехслойные – до 88%;

– шестислойные – до 96%.

По мере увлажнения марли фильтрующая способность маски снижается. Так, например, спустя 3 часа от начала использования 100% трехслойных марлевых масок обильно загрязнены микрофлорой.

С целью повышения эффективности фильтрующих масок последние пропитываются антисептиком (хлоргексидином биглюконатом и др.), высушиваются и автоклавируются, что позволяет удлинить срок эффективного использования в 1,5-2 раза.

Наиболее часто применяемые в настоящее время целлюлозные маски сохраняют эффективность не более часа.

Значительно реже применяются в настоящее время отражающие маски, в которых конденсат, образующийся при выдыхании воздуха, стекает по стенкам маски в специально предназначенные для этой цели емкости. К недостаткам данного типа масок относится, прежде всего, неудобство использования.

Маски необходимо носить в следующих случаях:

• всем медицинским работникам в операционной, перевязочной;

• в ряде случаев в отделении реанимации и палатах интенсивной терапии;

• при выполнении любых инвазивных манипуляций (перевязка в условиях палаты, инъекции и др.);

• при эпидемии гриппа.

Вентиляция. Проветривание помещения позволяет снизить количество микробных тел на 30%. Если используется система вентиляции с бактериальными фильтрами, то эффективность увеличивается до 70-80%. В тех случаях, когда к уровню микробной обсемененности помещения предъявляют особые требования, может быть использована приточная вентиляция, обеспечивающая приток воздуха в большем объеме по сравнению с оттоком.

Операционные с ламинарным потоком воздуха. В операционных указанного типа стерильный воздух постоянно нагнетается через потолок операционной. В результате создается равномерное ламинарное движение воздуха, что препятствует возникновению турбулентных потоков, поднимающих с нестерильных поверхностей пыль и микроорганизмы.

Палаты с абактериальной средой. Особенностью таких палат является наличие бактериальных фильтров, через которые обеспечивается ламинарное поступление воздуха. В палатах, как правило, поддерживается повышенная температура – 22-25° и низкая влажность (до 50%). Такие палаты наиболее часто используются в отделениях трансплантации органов и тканей и ожоговых центрах.

1. МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ 

Одним из наиболее важных вопросов является профилактика контактной инфекции, которая осуществляется согласно основному принципу асептики: «Все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно». Основными источниками контактной инфекции являются следующие:

• руки хирурга;

• кожные покровы больного;

• хирургические инструменты;

• шовный материал, дренажи, скобки, различные конструкции и др.;

• Перевязочный материал.

Подробные сведения о методах подготовки рук хирурга и операционного поля приведены в разделе 2 «Гигиенические требования, предъявляемые к хирургическому отделению».

Стерилизация — метод, обеспечивающий ликвидацию в стерилизуемом материале как вегетативных, так и споровых форм (в отличие от дезинфекции, когда споровые формы могут сохраняться) патогенных, условно-патогенных и непатогенных микроорганизмов.

С целью снижения уровня микробной обсемененности применяют термическую (паровая, воздушная), лучевую (радиактивными микроэлементами, ультразвуковыми, ультрафиолетовыми и инфракрасными лучами) и химическую стерилизацию (окисью этилена, парами формалина, пропиленом, бромистым метилом и др.).

Согласно современным представлениям кипячение не относится к методам стерилизации.

Термическая стерилизация осуществляется сухим паром в автоклаве (от 100 до 140 °С) или сухим жаром в сухожаровых шкафах (160—200 °С). Автоклавирование применяют для стерилизации предметов, которые не выдерживают сухожаровую стерилизацию (белье, резиновые изделия, синтетические предметы, закрытые ампулы и др.). Стерилизации ионизирующим излучением (2-2,5 Мрад) подвергаются лекарственные вещества, перевязочный материал, шприцы, иглы, шовный материал, перчатки, системы для внутривенного введения.

Химическая стерилизация – наиболее широко используется окись этилена. При концентрации окиси этилена 555 мг/л через 1 час погибают стрептококк, кишечная палочка, синегнойная палочка; через 4-7 часов стафилококк. Находит применение стерилизация надуксусной кислотой, 6% перекисью водорода и др.

Контроль стерильности 

Существует 3 группы способов контроля стерильности.

Физический — контроль за температурой в стерилизационной камере с помощью термометра; использование веществ (плавкие индикаторы), имеющих определенную температуру плавления. Плавкие индикаторы представляют собой порошкообразные вещества разного цвета, герметично запаянные в стеклянные ампулы.

В медицинской практике используется различные плавкие индикаторы: • никотинамид (порошок белого цвета с температурой плавления 132 °С);

• сахароза (порошок белого цвета с температурой плавления 180 °С);

• гидрохинон (порошок белого цвета с температурой плавления 180 °С;

• левомицетин (порошок белого цвета с температурой плавления 132 °С);

• тиомочевина (порошок желтого цвета с температурой плавления 180 °С);

• бензойная кислота (порошок розового цвета с температурой плавления 120 °С);

• мочевина (порошок фиолетового цвета с температурой плавления 132 °С) и др.

Недостаток данного способа контроля состоит в том, что мы не можем быть уверены, что температура поддерживалась на протяжении всего времени экспозиции.

Надежность контроля стерилизации может быть повышена путем использования термовременных индикаторов, отдельно для каждого уровня температуры (ТВИС-180, 160, 132, 120 НПО «ВИНАР»). Особенностью действия данных индикаторов является то, что они изменяют окраску до эталонного уровня только при соблюдении температурного режима в течение всего периода стерилизации. Полоски индикатора вкладывают в контрольные точки стерилизатора, при этом, если хоть один индикатор по окраске отличается от эталона, стерилизация считается недостаточной.

Химический – использование различных химических процессов, протекающих при определенной температуре, например фильтровальная бумага, смоченная в растворах крахмала и Люголя, приобретает темно-бурый цвет, при экспозиции в автоклаве при температуре свыше 120 °С крахмал разрушается, бумажка обесцвечивается. Недостаток метода аналогичен недостатку физического метода стерилизации.

Биологический — посев со стерильного материала на питательные среды. Нет роста колоний — материал стерильный, есть — необходима повторная стерилизация.

Бактериологический контроль качества стерилизации проводят один раз в 10 дней. Методы бактериологического контроля:

• прямой метод – в стерильных условиях осуществляют забор образца материала (салфетка, шарик, шовный материал и т.д.), помешают в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию;

• непрямой метод (биотест) – пробирку, содержащую известную культуру микроорганизмов помещают в стерилизатор вместе со стерилизуемым материалом и проводят стандартный цикл обработки. После завершения стерилизации пробирку с биокультурой отправляют в бактериологическую лабораторию. Материал из бикса, использованного для биотеста для работы не используют. При отсутствии роста микрофлоры делают заключение об адекватности стерилизации.

Недостаток метода заключается в том, что ответ мы получаем только спустя 48 часов после забора материала, а материал считается стерильным после автоклавирования в биксе тоже в течение 48 часов, т.е. материал должен быть использован до получения ответа из бактериологической лаборатории. Метод применяют для оценки качества работы стерилизационного оборудования, персонала и т.д.

Основные виды упаковок и сроки сохранения стерильности

Примечание: изделия, простерилизованные без упаковки, должны быть использованы сразу после стерилизации. Допустимо также хранение их в закрытых стерилизаторах в течение 16 часов с момента окончания стерилизации.

Ответственной за асептику является медицинская сестра, она обязана:

1. Знать требования, предъявляемые к СЭР и регламентируемые приказами, отраслевым стандартом, методическими рекомендациями санитарно-эпидемической службы.
2. Уметь осуществлять четыре этапа стерилизации:

Этапы стерилизации перевязочного материала, операционного белья, перчаток.

1. Предстерилизационная подготовка. Перевязочный материал. Готовится из марли-это разных размеров шарики ( 11 x 12, 8 x 9, 6 x 7 см) салфетки и тампоны ( 50 x 70, 40 x 60, 15 x 20 см) турунды ( от  5 x 50 до 5 x 200 см).

Вату используют для изготовления помазков ( ватных тупферов) ватно-марлевых повязок. шариков.

Помазок-деревянная палочка длинной 10-15 см, а один конец который плотно наматывается вата.

Ватно –марлевая повязка-тонкий слой ваты между 2-3 слоями марли.

Ватный шарик-плотно спрессованный кусочек ваты размером 10×10 см.

Перевязочный материал повторно не используется.

2. Укладка и подготовка операционного белья и перчаток к стерилизации. Халаты, полотенца, подкладные складывают соответствующим образом. Каждую пару перчаток заворачивают в двуслойную бязь.

Для стерилизации материала используют два вида биксов. Первый вид- биксы Шиммельбуша трех размеров ( большие, средние, малые) или коробки стерилизационные круглые ( КСК). Второй вид- коробки стерилизационные с антибактериальным фильтром ( КСПФ).

3. Собственно стерилизация. Биксы помещают в автоклав, герметически закрывают его крышкой или дверцу и готовят к работе в операционном режиме. Контроль работы автоклава осуществляется по показаниям манометра.  Различные виды материалов стерилизуются при разных режимах. По окончанию стерилизации автоклав отключается, выпускается пар. Биксы на некоторое время остаются   в автоклаве при открытой крышке ( дверце) для подсушивания, затем извлекаются  и сразу же металлическим поясом закрываются отверстия в стенах бикса: на этикетке ставится дата и время стерилизации. В чистых мешках биксы доставляют в отделения.
4.  Хранение стерильного материала. Стерильный материал хранится в отдельных помещениях. Закрытые КСК  упаковки из бязи и крепированной бумаги, крафт-пакеты сохраняются стерильность в течении 3 суток, а КСПФ – в течении 20 суток. Стерильность изделий в биксе с момента вскрытия сохраняется только 6 часов, при этом обязательно отмечается время вскрытия.

Контроль качества предстерилизационной обработки инструментов.

Самоконтроль в ЛПУ проводится не реже 1 раза в неделю. Контролю подвергают 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

Технология постановки амидопириновой пробы.

Цель: выявление остатков крови, лекарственных средств (ЛС), хлорсодержащих препаратов.

Смешивают в равных количествах ( по 2-3 мл) 5% спиртовой р-р амидопирина,30% р-р перекиси водорода.

На изделия наносят приготовленную смесь или протирают их  нестерильной ватой, на которую нанесен  вышеуказанный реактив.

При наличии остатков крови, ЛС, хлора проявляется сине-зеленное окрашивание проба положительна.

Технология  постановки азопирамовой пробы. 

Цель: выявление остатков крови, ЛС, хлорсодержащих препаратов, моющих средств, ржавчины.

Смешивают в равных количествах растворы азопирама и 3 % перекиси водорода.

Приготовленную смесь наносят на изделия или протирают нестерильной ватой, смоченной реактивом.

При наличии ржавчины и хлорсодержащих соединений появляется буроватое окрашивание в течении первой минуты. В остальных случаях – фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый цвет. Реакция, возникшая более чем через  минуту, не учитывается.

Дезинфекция 

Дезинфекция — комплекс мероприятий, направленных на прерывание путей передачи возбудителей посредством ликвидации патогенных и условно—патогенных микроорганизмов в помещениях лечебно-профилактических учреждений, на оборудовании, инструментах, предметах ухода за больными с целью профилактики заражения пациентов, медицинского и технического персонала.

Виды дезинфекции: 

• механический – мытье помещений и предметов моющими растворами, стирка, вентиляция и др.;

• физический – воздействие высокой температуры, высушивание, ультрафиолетовое облучение и др.;

• химический – применение антисептических и дезинфекционных средств;

• комбинированный – сочетание нескольких видов дезинфекции.

Приказы и рекомендации, регламентирующие работу лечебно-профилактических учреждений по созданию и поддержанию санитарно- противоэпидемического режима:

Отраслевой стандарт 42-21-2—85, определяющий методы, средства и режим дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения (шприцев, игл, инструментария). Приказ №720 от 31 июля 1978 года «Об улучшении медицинской помощи больным гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией». Приказ №916 от 4 августа 1983 года «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персо­ нала инфекционных больниц». Приказ №408 от 12 июля 1989 года «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране». СанПинН 5179-90 от 1991 года. Санитарные правила устройства, оборудования и эксплуатации больниц, родильных домов и других лечебных стационаров. Приказ №170 от 16 августа 1994 года «О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в Российской Федерации». Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях. Руководство РЗ.1.683-98 от 1998 года. СанПинН от 22 января 1999 года об утилизации отходов ЛПУ №2. Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений. Санитарно-эпидемические правила СП 3.1.958-99. Профилактика вирусных гепатитов. Общие требования к эпидемическому надзору за вирусными гепатитами. Приказ №109 от 21 марта 2003 года «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации».

2. ПРОФИЛАКТИКА СПИДа В ХИРУРГИИ  

Профилактика СПИДа в настоящее время является одной из наиболее злободневных проблем. Особое значение она приобретает в хирургии – применение инвазивных методов диагностики и лечения, постоянный контакт с кровью и т.д.

В профилактике СПИДа можно выделить несколько направлений:

• выявление вирусоносителей;

• выявление больных СПИДом;

• жесткое соблюдение правил техники безопасности.

Выявление вирусоносителей 

Обследованию на предмет выявления вируса иммунодефицита чело­ века (анализ крови: форма 50) подлежат следующие категории лиц:

• все больные, составляющие группу риска (наркоманы; лица с нетрадиционной половой ориентацией; лица, перенесшие вирусные гепатиты В и С, венерические заболевания; медицинские работники, имеющие повышенный риск контакта с кровью и другими биологическими жидкостями; и др.);

• больные, которым предстоит выполнение инвазивных методов диагностики и лечения;

• весь персонал операционных блоков, хирургических отделений, отделений переливания крови, гемодиализа, лабораторий и др., имеющих возможность контакта с кровью. Кроме того, у данного контингента лиц 1 раз в 6 месяцев, помимо определения вируса СПИДа, выполняются биохимический анализ крови, анализ крови на австралийский антиген и RW.

Выявление больных СПИДом 

В выявлении больных СПИДом большую роль играет знание медицинским работником любого уровня характерных проявлений данного заболевания. Следует помнить также, что патогномоничными признаками СПИДа являются саркома Капоши и пневмоцистная пневмония.

При наличии даже одного из характерных симптомов врач обязан провести исследование крови больного на форму 50.

Техника безопасности 

Правила техники безопасности включают соблюдение следующих требований:

• все манипуляции, при которых возможен контакт с кровью должны выполняться в медицинских перчатках (выполнение оперативных вмешательств, перевязок, инъекций, забора крови и т. д.);

• при попадании на кожу или слизистую (в том числе конъюнктиву глаза) каких-либо биологических жидкостей больного необходимо провести обработку данного участка антисептиками;

• при выполнении оперативных вмешательств целесообразно ношение специальных масок или очков;

• при попадании биологических жидкостей на окружающие предметы последние подлежат обязательной дезинфекции; лабораторные пробирки могут быть использованы повторно только после проведенной стерилизации;

• максимальное использование одноразовых инструментов, шприцев;

Использование многоразовых систем для переливания крови в настоящее время запрещено! 

• хирургические инструменты, предназначенные для многократного применения, перед предстерилизационной подготовкой и стерилизацией в обязательном порядке должны быть дезинфицированы, т.е. замочены в растворах сильных антисептиков. С указанной целью могут быть использованы 3% раствор хлорами­ на (длительность замачивания – 60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (длительность замачивания – 90 мин).

2. ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ, ПРЕДЪЯВЛЯЕМЫЕ К ХИРУРГИЧЕСКОМУ ОТДЕЛЕНИЮ 

При создании хирургического отделения учитывается предполагаемый объем хирургической помощи и контингент больных.

Для стерилизации воздуха в палатах и коридорах хирургического отделения устанавливают стационарные бактерицидные лампы из расчета 1 на каждые 6 кв. метров. На одного больного в стационаре положено не менее 6,5-7,5 кв. м площади при высоте помещения не менее 3,0 м и ширине не менее 2,2 м. Ориентация окон палат и лечебно-диагностических кабинетов допустима любая, но соотношение площади окон и пола – 1:6 или 1:7. Температура воздуха в палатах должна быть в пределах 18-20 °С, влажность 50-55%. Во всех отделениях существует график проветривания, что значительно снижает уровень бактериальной обсемененности воздуха (до 30%).

Хирургическое отделение должно быть приспособлено для выполнения многократных влажных уборок с использованием антисептических средств. Ежедневно утром и вечером производится влажная уборка помещений; один раз в три дня моют и протирают стены; один раз в месяц очищают от пыли верхние части стен, потолки, светильники, дверные и оконные рамы. В связи с этим, для облегчения уборки помещений полы в хирургическом отделении должны быть покрыты линолеумом, кафелем или пластиком; стены выложены плиткой или покрашены краской. В операционных и перевязочных такие же требования предъявляют и к потолкам. Мебель в большинстве случаев изготавливается из металла или пластмассы, при этом количество мебели должно быть ограничено необходимым минимумом. Операционный блок Основополагающим работы операционного блока является строжайшее соблюдение принципов асептики. В связи с этим выделяют разные виды операционных: плановые, срочные; чистые и гнойные. При составлении расписания предстоящих операций в обязательном порядке руководствуются следующим правилом — вначале выполняются «чистые» операции с минимальным уровнем бактериального загрязнения, а затем все остальные, в порядке возрастания бактериальной обсемененности.

Операционный блок желательно размещать в изолированном помещении с ориентацией окон на север или северо-запад, соединенном переходом с отделением и палатами интенсивной терапии или реанимации. Стены, пол, потолок операционной должны быть доступны для постоянной обработки антисептическими средствами. В операционной и перевязочной температура воздуха должна быть не более 24 °С, влажность 50%.

Операционный блок должен содержать только самую необходимую мебель и технические средства. Перемещения и движения персонала в операционной, по возможности, сокращаются до минимума, чтобы не создавалось турбулентных потоков воздуха. В операционной не должны находиться лишние люди. После операции количество микробов в 1 куб. м воздуха возрастает в 3—5 раз, а при присутствии, например, в качестве наблюдателей дополнительно 6-7 человек — в 25-30 раз и более. Оптимальным для просмотра операций студентами и слушателями является организация специальных куполов или использование синхронной системы видеонаблюдения.

Важным моментом является ограничение разговоров. Так, в покое за один час человек выделяет 10-100 тыс. микробных тел, а при разговоре – до 1 млн. и более.

При проведении операций необходимо осуществлять строгое и четкое разделение операционных залов на зоны:

• стерильная зона (операционная, стерилизационная);

• зона строгого режима (предоперационная, наркозная, аппаратная);

• зона ограниченного режима (инструментально-материальная, лаборатория срочных анализов, комната медицинских сестер, хирургов, протокольная);

• зона общебольничного режима.

Лица, участвующие в операции должны проходить регламентированную санитарно-гигиеническую подготовку (принятие душа, переодевание в хирургические костюмы, бахилы, фартуки, одевание маски).

Недопустимо посещение операционных в шерстяных вещах.

Перед входом в операционный блок обязательным является соблюдение «Правила красной черты» т.е., все, входящие за «красную черту», должны надеть халат, шапочку, маску и бахилы.

Виды уборки операционного зала: 

1. Предварительная — проводится ежедневно утром перед началом операционного дня.

2. Текущая — при проведении операции убирают упавшие на пол предметы, вытирают пол, загрязненный кровью и другими жид­ костями. По окончании операции обрабатывают операционный стол, пол вокруг стола и др.

3. После каждой операции — вынос из операционной отработанных материалов, обработка операционного стола раствором антисептика, смена белья, по необходимости — мытье пола, подготовка инструментария, оборудования и стерильного столика к следующей операции.

4. Заключительная – проводится после окончания операционного дня и включает в себя: мытье пола, стен на высоту человеческо­ го роста, протирание мебели, аппаратуры. Весь перевязочный материал, белье выносится в другие помещения.

5. Генеральная уборка — мытье операционной один раз в 7—10 дней горячей водой с мылом и антисептиками, включая потолок. Протирают мебель и аппаратуру.

Уборка операционных осуществляется влажным способом (1% раствором хлорамина Б, 3% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором моющих средств и др.).

Для дезинфекции воздуха в операционной и перевязочной рекомендуется использование бактерицидных ультрафиолетовых ламп, способствующих снижению микробного обсеменения на 50—80% за 2 часа по сравнению с исходным состоянием.

Вентиляция операционных осуществляется через установки кондиционирования воздуха, бактериальные фильтры. Обмен воздуха выполняется 7-10 раз в час под небольшим давлением. В последнее время все шире стали применяться установки обеспечивающие подачу ламинарного потока стерильного воздуха с обменом до 500 раз в 1 час.

Операционные по уровню стерильности можно разделить на 3 класса:

• первый класс – не более 300 микробных клеток в 1 кубическом метре воздуха.

• второй класс — до 120 микробных клеток (сердечно-сосудистая операционная).

• третий класс – не более 5 микробных клеток в кубическом метре воздуха (класс абсолютной асептики). Этого можно добиться в герметичной операционной, с вентиляцией и стерилизацией воздуха, с созданием внутри операционной зоны повышенного давления (чтобы воздух стремился из операционных наружу) со специальными дверями—шлюзами.

Правила гигиены в отделении хирургического профиля должны выполняться неукоснительно как больными, так и всеми сотрудниками отделения. Контроль возлагается на заведующего отделением и старшую медсестру. Основная работа по обеспечению санитарно-гигиенического режима ложится на санитарок и медсестер отделения.

Дезинфицирующие растворы для обработки помещений и оборудования готовят, как правило, в начале рабочего дня.

Приготовление и показания к применению различных дезинфицирующих растворов

Алгоритм действий при попадании дезинфицирующего раствора на кожу, в глаза, рот, дыхательные пути

Техника безопасности 

Дезинфицирующие растворы не токсичны, но при нарушении техники безопасности могут попадать на кожу и слизистые, вызывая раздражение, вплоть до отравлений при их всасывании.

Перед началом работы с дезинфектантами сестра-хозяйка обязана выдать средства защиты, а старшая медсестра – провести инструктаж по технике безопасности.

Приготовление растворов и их хранение проводят в санитарской комнате, где имеются: раковины, унитаз, ванны и полки для хранения предметов ухода.

Для приготовления растворов, замачивания инструментов и предметов ухода для дезинфекции используют специальные маркированные емкости (указывают предназначение, название и концентрацию раствора). Маркированные емкости с дезрастворами и емкости для обработки помещений должны находиться на подставках или полках. Никаких манипуляций с больными в этих помещениях не выполняют. Приготовленные растворы годны в течение суток.

Уборку помещений в отделениях проводят дважды в день влажным способом. В асептических отделениях используют 2% мыльно – содовый раствор (на 10 литров воды — 20 г стирального порошка); в гнойно-септических отделениях применяют 1% раствор хлорамина, или 3% раствор перекиси водорода с моющим средством. Воздух стерилизуют дважды в день ультрафиолетовым облучением.

2.1. ПРОФИЛАКТИКА ИМПЛАНТАЦИОННОЙ ИНФЕКЦИИ

Имплантационная инфекция вызывается вводимыми в ткани нестерильными чужеродными предметами: шовным материалом, протезами, металлическими конструкциями для остеосинтеза, лекарственными веществами. Она может способствовать развитию нагноения, сепсиса, остеомиелита, заражения больного гепатитом, СПИД.

Направления профилактики:

•Использование стерильных одноразовых шприцов, аллопротезов (клапаны сердца, искусственные сосуды и суставы), инструментария.

•Контроль за использованием медицинских изделий. Шприцы и иглы одноразового использования вскрывают только в присутствии больного (в детских ЛПУ – в присутствии матери или старшей медсестры).

•Тщательная обработка использованного материала. После использования шприцы и иглы промывают проточной водой, замачивают в 3% растворе хлорамина на 2 часа, после чего ополаскивают проточной водой; спиливают канюлю и сдают старшей медсестре для передачи на уничтожение. Многоразовые иглы и шприцы, которые могут применяться только в операционных и перевязочных, после использования промывают проточной водой, разбирают, замачивают на 2 часа в 6% растворе перекиси водорода с моющим средством. Вновь промывают проточной водой, проводят полную обработку и стерилизацию по ОСТу.

Шовный материал: использование и применение 

Шовный материал: кетгут, капрон, лавсан и другие синтетические нити поступают в разовых упаковках. В качестве упаковок используются конверты или ампулы. Конверты с шовным материалом хранят в обычном шкафу, ампулы – в автоклавированных банках с 96% спиртом. Спирт в банках меняют каждые 10 дней.

Собственный шовный материал (кетгут, хлопчатобумажные и синтетические нити) изготавливают медсестры операционного отделения под контролем старшей медсестры.

Банки со стерильным шовным материалом хранят в сейфе, крышки должны быть покрыты ватно-марлевым чехлом. Спирт в банках меняют каждые 10 дней с забором материала на бактериологическое исследование. Забор шовного материала из банки производят в необходимом количестве на инструментальный столик, изъятый неиспользованный материал подвергается повторной стерилизации.

2.2. ПОДГОТОВКА РУК К ОПЕРАЦИИ

Обработка рук хирурга является одним из наиболее ответственных этапов подготовки к предстоящему оперативному вмешательству.

В большинстве случаев обработка рук включает последовательное выполнение трех основных этапов: 1) механическая обработка, 2) химическая (обезжиривание кожных покровов) и 3) воздействие антисептических средств.

Механическая обработка, как правило, проводится параллельно с химической и заключается в мытье рук под краном с мылом (или жидкими моющими средствами). Руки тщательно моются от кончиков пальцев до верхней трети предплечья. При мытье рук необходимо соблюдать важный принцип: «не касаться обработанными участками рук необработанных кожи и предметов».

Используемые для обработки рук антисептические средства должны отвечать определенным требованиям:

• обладать выраженным антисептическим действием;

• быть безвредными для кожных покровов;

• быть экономически выгодными для применения в больших объемах.

Для поддержания стерильности кожных покровов в течение длительного времени используется или дубление кожи с помощью анти­ септиков, обладающих такими свойствами или путем использования пленкообразующих антисептиков.

Метод Спасокукоцкого-Кочергина (в настоящее время, как и ряд других методов – Фюрбрингера, Альфельда, имеет лишь исторический интерес и в клинической практике не применяется):

– моют руки под струей воды с мылом в течение 1 минуты (отрицательным эффектом мытья рук щеткой является возможность получения микротравм кисти, являющихся входными воротами для инфекции, в связи с чем в настоящее время щетки при мытье рук не применяются);

– моют руки марлевой стерильной салфеткой или губкой по 3 минуты в предварительно простерилизованных обжиганием 2-х эмалированных тазиках, заполненных свежеприготовленным раствором 0,5% нашатырного спирта: в первом тазике до локтя, во втором — только кисти и запястья;

– вытирают стерильными салфетками кисти, затем предплечья рук;

– обрабатывают руки в течение 5 минут 96% этиловым спиртом, ногтевые ложа 5% спиртовой настойкой йода.

Обработка рук первомуром (раствором С—4) 

Приготовление раствора первомура для обработки рук хирурга.

Первомур готовят следующим образом: 171 мл перекиси водорода 33% и 81 мл 85% муравьиной кислоты сливают в стеклянную колбу (вначале вливают перекись водорода, а затем муравьиную кислоту), встряхивают ставят в холодильник на 90 минут для образования анти­ септического реагента – надмуравьиной кислоты. Исходный раствор можно хранить 24 часа. Полученную смесь разводят дистиллирован­ ной водой до 10 литров. Полученный раствор в течение суток может использоваться для обработки рук и операционного поля. Раствор наливают в обеззараженный путем обжигания или протирания первомуром эмалированный тазик.

Этапы обработки:

– руки моют с мылом в проточной воде 1 минуту (без щеток), осущивают полотенцем;

– моют руки в растворе первомура в течение 1 минуты (30 сек до локтя и 30 сек только кисти и нижнюю треть предплечий);

– осушивают стерильной салфеткой сначала кисти, затем предплечья до локтя.

Обработка рук хлоргексидином биглюконатом (гибитаном) 

Рабочий раствор хлоргексидина биглюконата готовят путем раз­ ведения исходного 20% раствора хлоргексидина биглюконата 70% этиловым спиртом в соотношении 1:40.

Этапы обработки:

– моют руки проточной водой с мылом, осушивают стерильными салфетками;

– обрабатывают руки с помощью нескольких марлевых шариков, смоченных 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата не менее 3 минут сначала до локтя, затем запястья и кисти;

– осушивают стерильной салфеткой; – надевают стерильные резиновые перчатки.

Обработка рук дегмином и дегмицидом 

Обработка производится в тазах в течение 5-7 мин, после чего руки высушиваются стерильной салфеткой.

Недостатком данного метода является длительность обработки.

В экстренных случаях при выполнении краткосрочных операций иногда применяют (в настоящее время редко) синтетическое пленочное покрытие рук хирурга (церигель). В течение 2—3 минут церигель тщательно наносится на кожные покровы рук для образования пленки.

В ряде случаев можно использовать обработку рук по способу Бруна, заключающегося в обработке рук 96% этиловым спиртом в течение 10 минут.

2.3. ПОДГОТОВКА ОПЕРАЦИОННОГО ПОЛЯ

Перед операцией (за исключением экстренных хирургических вмешательств, при тяжелом состоянии больного) в рамках предоперационной подготовки проводится полная Санитарно-гигиеническая обработка больного: мытье в ванне, смена постельного и нательного белья.

На операционном столе операционное поле обрабатывают анти­ септическими препаратами (органические йодсодержащие препараты, спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата, 70° этиловый спирт, стерильные клеящиеся пленки и др.).

Принципы подготовки операционного поля: 

• обработка широкой области, а не только зоны в проекции предстоящего разреза (для обеспечения дополнительной стерильности, в том числе в случаях, когда во время операции требуется внеплановое расширение операционного доступа);

• обработка операционного поля производят по принципу: «от центра к периферии»;

• более загрязненные участки обрабатывают в последнюю очередь;

• соблюдение правила Филончикова-Гроссиха – многократность обработки кожных покровов: обработка кожи перед ограничением операционного поля стерильным бельем; обработка непосредственно перед разрезом; по показаниям — обработка по ходу операции; обработка до и после наложения кожных швов.

2.4. СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПЕРЧАТОК

Физическая стерилизация. Наиболее часто используется стерилизация в автоклаве при давлении 1,1 атм. в течение 45 минут или ионизирующим излучением (7—лучи — оптимальная доза 2,5 Мрад, 45 минут).

Химическая стерилизация. Обработка в 6% растворе перекиси водо­ рода и 0,5% растворе детергента в течение 3-х часов при температуре 50 °С. Стерилизация в автоматических газовых стерилизаторах МСВ— 532 при концентрации окиси этилена 555 мг/л в течение 4-х часов. Стерилизация йодофорами: 0,05% раствор поливинилпирролидон йод или сульфонат йод в течение 2 минут. Для поддержания стерильности по ходу операции перчатки обрабатывают 96% раствором этилового спирта или первомуром.

Наиболее оптимальным решением является использование одноразовых перчаток, стерилизованных промышленным способом.

2.5. ГИГИЕНА МЕДИЦИНСКОГО ПЕРСОНАЛА 

В работе хирургического отделения любого профиля большое значение имеет профилактика и борьба с хирургической инфекцией. Одним из источников хирургической инфекции является медицинский персонал, поэтому гигиена медицинского персонала является важным пунктом в ее профилактике.

Персонал отделения должен тщательно следить за собой и не становится источником инфекции. Значимыми являются даже небольшие гнойнички, экзема, кариозные зубы. Заведующий обязан не реже одного раза в квартал организовывать обследование обслуживающего персонала отделения на выявление носителей патогенного стафилококка и их санацию. После проведенной санации обследование проводят повторно и допускают работника к выполнению должностных обязанностей только в случае получения отрицательного ответа.

При выявлении внутрибольничных инфекций среди больных проводят внеочередной осмотр всего персонала отделения, бактериологическое обследование на носительство.

Следует обращать внимание на внешний вид медицинских работников. Количество украшений, косметики должно быть минимальным.

В хирургическом отделении обязательным является использование спецодежды. Все работники без исключения должны иметь сменную обувь; халаты, специальные костюмы из легкой ткани, медицинские колпаки (не обязательно белого цвета), которые должны быть приспособлены к многократной стирке. Оптимальным является организация санпропускников, когда сотрудники, приходя на работу, принимают гигиенический душ и надевают спецодежду.

Выход за пределы стационара (а в ряде случаев и отделения) в спецодежде запрещен. 

Медицинская сестра и врач во время проведения перевязок больным с нагноительными процессами должны надеть клеенчатый фартук, который протирается после каждой перевязки дезинфицирующим раствором, меняются перчатки. Для обеззараживания рук можно использовать этиловый спирт, хлоргексидина биглюконат и др.

Все лица участвующие в оперативном вмешательстве перед операцией принимают гигиенический душ, надевают операционное белье (хирургический костюм, тапочки, халат). Перед входом в операционный зал халат снимают. Надевают маску, бахилы, фартук, производят обработку рук. Непосредственно в операционной надевают стерильный халат, перчатки. Категорически запрещается появление в операционной без маски, с распущенными волосами, в уличной обуви. Покидать пределы операционного блока в спецодежде нельзя.

2.6. РОЛЬ ХИРУРГИЧЕСКОЙ МЕДИЦИНСМКОЙ СЕСТРЫ В СОБЛЮДЕНИИ САНИТАРНО-ЭПИДЕМИЧЕСКОГО РЕЖИМА (СЭР).

Участие медицинской сестры в лечении хирургического больного имеет не менее важное значение, чем работа хирурга. Успех операции зависит от качества подготовки больного к операции, помощи хирургам во время операции, ухода за пациентом в послеоперационном периоде вплоть до восстановления трудоспособности. В период реабилитации важная роль отводится хирургической медицинской сестре поликлиники. На всех этапах лечения медсестра постоянно контактирует с пациентом, выявляет и решает его проблемы, осуществляет сестринский уход.

Характер деятельности медицинской сестры разнообразен и зависит от подразделения, где она работает. Отличительной особенностью работы медсестры хирургического стационара, кабинета поликлиники, является строжайшее соблюдение СЭР, так как асептика защищает от инфицирования не только больного, но и медперсонал. Перед началом работы надеть спецодежду, сменную обувь, колпак, иметь маску.

Работа на посту.

Постовая медсестра – активный помощник врача. Ее  основные функциональные обязанности:

– участие в обходе больных врачом.

– соблюдение принципов деонтологии и медицинской тайны.

– выписывание, хранение, раздача лекарств, согласно правилам (список А и Б).

– выполнение лечебных назначений врача.

– подготовка инструментов.

– сбор материала от больного для лабораторных исследований.

– умение своевременно выявлять возможные послеоперационные осложнения.

– умение оказывать первую помощь при неотложных состояниях (непрямой массаж сердца, искусственная вентиляция легких, венепункция и начало инфузионной терапии и др.)

Основные обязанности постовой медсестры хирургического отделения:

– соблюдение гигиены больных,

– своевременная смена постельного белья и нательного белья больного.

– контроль за чистотой палат и влажной уборкой на отделении.

– подготовка операционного поля к операции.

– наблюдение за послеоперационной раной.

– наблюдение за внешним видом больного (измерение пульса, АД, частота дыхания и др. ) после операции.

Работа в процедурном кабинете.

Процедурный кабинет предназначен для забора крови на  различные исследования, выполнения всех видов инъекций, внутривенных введении лекарственных веществ. Подготовка к переливанию крови, ее компонентов, кровезаменителей.

Алгоритм действий медсестры:

1. Общие положения.

1. Надеть спецодежду, освободить руки от колец, браслетов, часов.
2. Дежурная смена должна провести уборку процедурного кабинета перед передачей дежурств.
3. Подготовить емкости для дезинфекции и использованного инструментария и материала:

-расставить их в удобном для работы порядке.

– проверить срок годности дезинфицирующих средств.

– заполнить емкости необходимым количеством дезраствора.

4. Сдать накануне подготовленные биксы с материалом в ЦСО.
5. Доставить стерильные биксы из ЦСО.
6. Провести гигиеническое мытье рук.
7. Приготовить промаркированные лотки для внутривенных  и внутримышечных инъекций пациентам с хроническим вирусным гепатитом. При отсутствии таких лотков инъекции таким пациентам выполняются в последнюю очередь.
8. Подготовить стерильные биксы к работе:

-поставить дату и время вскрытия.

–  установить биксы на подставку и вскрыть его.

–  проверить индикатор стерильности.

9. Простерилизовать подготовленные лотки путем обжигания 70% спиртом.
10. Надеть маску, провести гигиеническую антисептику рук, надеть стерильные перчатки.
11. Накрыть стерильные  лотки стерильным полотенцем  помощью  стерильных пинцетов.
12. Разделить лоток на три условных зоны:

первая зона – под второй верхний слой стерильного полотенца с помощью пинцета выложить стерильные шарики.

вторая зона – вскрытые стерильные шприцы, заполненные инъекционными растворами и закрытые иглой с колпачком, уложить под второй верхний слой стерильного полотенца центре лотка.

третья зона –  под второй верхний слой стерильного полотенца уложить стерильный пинцет для работы на лотке.

13. При заборе крови из вены рекомендуется:

– после каждого пациента проводить смену перчаток и обработку валика, жгута дезинфицирующим раствором.

– полная дезинфекция по ОСТу валика и жгута в случае загрязнения их кровью.

14. После окончания забора крови у всех больных:

– сбросить полотенце в мешок для грязного белья.

– перекрыть стерильный лоток для внутривенных инъекций, соблюдая правила антисептики.

15. При выполнении внутривенных инъекций пациенту, находящемуся в постели, перед входом в палату на наружный слой стерильного полотенца выложить пару стерильных перчаток, флакон со спиртом.
16. Выполнить внутривенную инъекцию в палате только одному пациенту, после чего:

– вернуться в процедурный кабинет.

– сбросить использованный инструментарий материала в накопитель или дезинфицирующий раствор.

– обработать наружную поверхность лотка дезинфицирующим средством.

– приготовить раствор для следующего пациента.

     II. Кратность смены стерильных перчаток.

1. При заборе крови из вены после каждого пациента.
2. При постановке капельниц и внутривенных инъекций – после каждого пациента.
3. При внутримышечных инъекций – 1 пара перчаток на 4-5 пациентов с соответствующей обработкой после каждого пациента.
4. При загрязнении перчаток кровью и нарушении их целостности сразу сбросить их в дезинфицирующий раствор
5. Выполнять все процедуры только в печатках.

3. Кратность смены стерильного белья на процедурных лотках.

1. После забора крови из вены.
2. После постановки капельниц и внутривенных инъекций.
3. После внутримышечных инъекций или каждые три часа.
4. При загрязнении кровью.

4. Работу не связанную с проведением инъекций, выполняйте в другом мед халате (хранится отдельно).
5. Уборка процедурного кабинета с использованием дезинфецирующих средств.

1. Текущая уборка проводится в течении рабочего дня.
2. Заключительная уборка в конце дня.
3. Генеральная уборка раз в неделю.
4. Кварцевание каждые 2 часа по 15 минут.

Работа в перевязочной.

Перевязочная предназначенная для осмотра ран проведения перевязок и небольших операций ( ПХО пункции и др).

Алгоритм действий медицинской сестры:

1. Общие положения.

1. Надеть спецодежду, освободить руки от колец, браслетов, часов.
2. Подготовить и  заполнить дезинфицирующим раствором емкости для дезинфекции перевязочного материала, инструментов
3. Протереть горизонтальные поверхности от пыли влажной тряпкой, смоченной дезинфицирующим раствором.
4. Включить сухожаровой шкаф с загруженными инструментами для стерилизации.
5. Сдать накануне подготовленные биксы с материалом в ЦСО.
6. Доставить стерильные биксы из ЦСО
7. Провести гигиеническое мытье рук
8. Подготовить стерильные биксы к работе
9. Надеть маску, провести хирургическую асептику рук, надеть стерильный халат и перчатки.
10. Накрыть стерильный стол согласно алгоритму:
11. Приступить к перевязкам
12. Отработанный перевязочный материал, инструменты перчатки сбросить в соответствующие емкости.
13. После завершения перевязок провести дезинфекцию использованного  материала, дезинфекцию одноразового инструментария, дезинфекцию, предстерилизационную очистку, стерилизацию многоразового хирургического инструментария, перчаток по ОСТу

2. Краткость смены стерильных перчаток.

1. При инструментальной перевязки-1 пара на 3-5 манипуляций
2. При загрязнении  перчаток кровью, выделениями из раны- после каждого пациента

3. При перевязках в палате набор для инструментальной перевязки собирается на стерильный лоток для одного пациента.
4. Работу, не связанную с проведением перевязок, накрытием стерильного стола, выполняют в другом медицинском халате (хранится отдельно)
5. Уборка перевязочной проводится по ОСТу (см.: Работа в процедурном кабинете)

Работа в операционной

Основная обязанность операционной медицинской сестры – полное оснащение операции, асептическая подготовка больного к ней, соблюдение асептики во время операции. Она в полной мере отвечает за асептику операционной, поэтому в этом отношении ей подчиняются не только санитарки, но и  все, кто находится в операционной – врачи, студенты. Старшая операционная сестра должна еженедельно проводить выборочный контроль стерильности бактериологическим методом: взятие смывов с рук персонала, инструментов, операционного поля, перевязочного материала и т.д.

Алгоритм подготовки к операции (первой готовится операционная медицинская сестра):

1. Надеть спецодежду, снять кольца, часы
2. Подготовить и заполнить емкость дезинфицирующими средствами
3. Протереть горизонтальные поверхности от пыли влажной тряпкой, смоченной дезинфицирующим раствором
4. Провести гигиеническое мытье рук
5. Подготовить стерильные биксы к работе ( поставить дату, время вскрытия, вскрыть, проверить индикатор стерильности)
6. Надеть маску, бахилы
7. Провести хирургическую асептику рук
8. Надеть стерильный халат
9. Надеть стерильные перчатки
10. Накрыть стерильный стол
11. Предложить хирургу и ассистенту переодеться и провести хирургическую асептику рук.
12. Подать хирургу корнцангом с салфеткой, смоченной антисептиком, для широкой обработки операционного поля.
13. Надеть на хирурга и ассистента стерильные халаты
14. Подать хирургу и ассистенту простыни для ограничения операционного поля
15. Надеть на врачей стерильные перчатки
16. Подать хирургу корнцанг с салфеткой, смоченной антисептиком, для повторной обработки операционного поля.
17. Подать скальпель для разреза кожи.

Работа хирургического кабинета поликлиники

Хирургическое отделение поликлиники включает кабинет врача (прием больных), перевязочную ( лучше две –чистая и гнойная), операционную.

Особенности  работы медицинской сестры хирургического кабинета:

– Систематическая тщательная влажная уборка и кварцевание помещений (большое количество больных, проходящих в верхней одежде);

– Сортировка больных на первичных и повторных, «чистых» и « гнойных»

– Гигиеническая обработка рук после осмотра каждого больного

– Строгое соблюдение правил асептики и антисептики в перевязочной, операционной

– Перевязки только инструментальные

– Перевязки ослабленных и неуравновешенных больных в положении лежа

7. ХИРУРГИЧЕКИЕ МАНИПУЛЯЦИИ В АСЕПТИЧЕСКИХ УСЛОВИЯХ

Надевание стерильного халата

Требования к хирургическим халатам: целостность, наличие тесёмок на рукавах и сзади халата по всей длине, отсутствие карманов.

Алгоритм надевания халата на себя ( медицинская сестра в колпаке, маске, бахилах, руки стерильные)

1. Открыть крышку бикса с помощь ножной педали
2. Проверить индикатор стерильности
3. Отогнуть простынь, выстилающую бикс, вынуть стерильный халат
4. Развернуть халат по всей длине, не касаясь окружающих предметов и своей одежды
5. Одномоментно вдеть обе руки в рукава халата и накинуть его на себя
6. Попросить санитарку завязать все тесемки сзади или скрепить края халата бельевыми цапками ( жесткая фиксация)
7. Обернуть тесемки на рукавах вокруг обшлага на каждой руке и завязать их, убрав концы под тесемки.
8. Надеть стерильные перчатки

Алгоритм надевания халата на хирурга:

1. Доставить стерильный халат из бикса
2. Развернуть его наружной стороной к себе и набросить на хирурга так,, чтобы он одновременно просунул обе руки в рукава халата
3. Попросить санитарку выполнить сзади жесткую фиксацию халата
4. Предложить хирургу завязать тесемки на рукавах или завязать их самой

         Надевание стерильных перчаток

Алгоритм надевания перчаток на себя:

1. Открыть крышку бикса с перчатками с помощью ножной педали
2. Проверить индикатор стерильности
3. Извлечь упаковку с перчатками
4. Положить упаковку на стерильный стол и развернуть ее
5. Взять правую перчатку четырьмя пальцами левой руки за отворот манжета так, чтобы ваши пальцы не касались наружной (лицевой) поверхности перчатки.
6. Сомкнуть пальцы правой руки и натянуть на нее перчатку, не расправляя отворота.
7. Завести четыре пальца правой руки, одетой в печатку, обшлаг левой перчатки так чтобы 1 палец правой кисти был  отведен в сторону.
8. Держать левую перчатку четырьмя пальцами правой руки вертикально.
9. Сомкнуть пальцы левой руки и ввести ее в перчатку.
10. Расправить отворот четырьмя пальцами противоположной руки сначала на левой перчатки затем на правой.
11. Протереть перчатки шариком со спиртом для снятия талька.

Алгоритм надевания перчаток на хирурга:

1. Достать упаковку с перчатками из бикса.
2. Положить упаковку на стерильный стол и развернуть ее.
3. Ввести четыре пальца обеих рук в подернутые края манжета и растянуть их.
4. Держать растянутую перчатку так чтобы ее большой палец смотрел на вас.
5. Натянуть перчатку на руку хирурга.
6. Аналогичным образом надеть перчатку на другую руку.

Алгоритм снятия перчаток.

1. Подхватить край правой перчатки 2 и 3  пальцами левой руки и поднять ее слегка вверх.

2.Снять правую перчатку вывернув ее наизнанку.

3. Взять вывернутую перчатку правой руки и снять ею перчатку с левой руки.

4.Погрузить использованные перчатки в дезинфекционный раствор.

Накрытие стерильного стола

Приготовить к работе бикс видовой укладкой из 5 простыней и клеенки. Медицинская сестра в стерильном халате, перчатках, маске открывает бикс с помощью ножной педали и приступает к накрытию стерильного стола.

Алгоритм накрывания стола:

1. Открыть крышку бикса, используя ножную педаль
2. Проверить индикатор стерильности
3. Отогнуть простыню, выстилающую бикс, так, чтобы она закрыла края бикса
4. Достать клеенку, развернуть ее по длине, не касаясь окружающих предметов
5. Расстелить клеенку в один слой на столе в направлении от себя
6. Достать первую простыню, развернуть ее по длине, расстелить в один слой на столе от себя как можно ниже, не касаясь пола
7. Достать вторую простыню, развернуть ее в два слоя, расстелить на столе так, чтобы края ее свисали на 10 см от края стола
8. Достать третью простыню, развернуть ее в два слоя, расстелить на столе так, чтобы края ее свисали на 10 см от края стола
9. Достать четвертую простыню развернуть и расстелить ее так же, как и третью
10. Достать пятую простыню, развернуть ее и в один слой и расстелить ее так, чтобы она прикрыла вторую простыню
11. Наложить на пятую простыню два корнцанга на уровне углов стола
12. Открыть пятую простыню « гармошкой», оставив полку для корнцангов
13. Взять два слоя четвертой простыни, один слой третьей и наложить бельевые цапки по углам
14. Открыть скрепленные слои « гармошкой» положив цапки на полку.
15. Разложить последовательно стерильные инструменты и материал
16. Закрыть стерильный стол, последовательно берясь за цапки и корнцанги
17. Прикрепить бирку с датой и временем накрытия стола ( стол стерильный в течении 6 ч)

Инструментальная перевязка

Перевязка – процедура включающая, снятие старой повязки, выполнение профилактических, диагностических мероприятий в ране и наложение новой повязки.

Показания к перевязке раны:

– Первые сутки после операции

– Боль в области послеоперационной раны

– Промокание повязки

– Загрязнение повязки

– Смещение повязки

– Контроль процесса заживления раны

– Проведение лечебных мероприятий ( снятие швов, удаление дренажей, промывание раны, местное применение лекарственных препаратов и т.д)

Для инструментальной перевязки мед. Сестра готовит: стерильные водные и спиртовые растворы антисептиков, лекарственные препараты для местного применения, бензин или эфир, стерильные лотки, пинцеты, ножницы, корнцанги, перевязочный материал, перчатки, клеол, лейкопластырь, емкости с дезинфицирующими растворами.

Алгоритм инструментальной перевязки чистой послеоперационной раны:

1. Заполнить емкости дезинфицирующими растворами
2. Выполнить гигиеническое мытье рук.
3. Проверить стерильность всех используемых предметов
4. Промаркировать флаконы с лекарственными веществами (дата, время, вскрытия).
5. Отлить растворы в отдельные стерильные емкости для каждого пациента
6. Подготовить стерильный лоток для одного пациента ( ножницы, два хирургических пинцета, салфетки, шарики, помазки)
7. Пригласить пациента и разместить его в удобном для перевязки положение
8. Подстелить под область раны клеенку
9. Надеть чистые перчатки
10. Снять верхние нестерильные салфетки руками
11. Снять остатки клеола на коже бензином или эфиром
12. Пинцетом быстро и безболезненно удалить загрязненную повязку
13. Осмотреть рану, о патологических процессах сообщить врачу
14. Взять пинцетом стерильный шарик или салфетку, смочить водным антисептиком
15. Обработать им кожу вокруг раны от цента к переферии.
16. Высушить кожу салфеткой, сбросить пинцет
17. Обработать края раны спиртосодержащим антисептиком с помощью помазка
18. Вторым пинцетом взять стерильную салфетку и закрыть рану, сверху  положить салфетку в один слой
19. Закрепить верхнюю салфетку с помощь клеола или лейкопластыря; излишки марлевой салфетки срезать ножницами
20. Все использованные предметы, перчатки опустить а накопитель или дезинфицирующий раствор, согласно инструкции
21. Выполнить гигиеническое мытье рук
22. Записать данные о состоянии раны и выполненной процедуры в сестринский блокнот или карту наблюдения

3. АНТИСЕПТИКА 

Выдающийся русский хирург И.И. Пирогов одним из первых предположил возможность передачи инфекции через руки хирурга, белье и постельные принадлежности, а также применил для дезинфекции спирт, ляпис, йод. В 1847 г. венгерский врач акушер-гинеколог И. Земельвейс применил с целью профилактики послеродового сепсиса обработку рук 10% раствором хлорной извести. В 1863 г. Луи Пастер открыл природу гниения и брожения, позволив утверждать, что причиной многих раневых осложнений являются микроорганизмы. В 1897 году Цеге-Мантейфель предложил оперировать в стериль­ ных резиновых перчатках. В 1967 году английский хирург Д. Листер разработал систему мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране, получивших наименование антисептического мето­ да хирургической работы.

Антисептика (anti – против, septicus – гниение) — единый лечебно- профилактический комплекс мероприятий, направленных на уменьшение количества микробов в ране, снижение их жизнеспособности, опасности проникновения в окружающие ткани и другие среды организма, а также на повышение иммунно-биологической активности организма больного, его реактивности. Термин «антисептик» ввел в 1750 г. английский хирург Дж. Прингл, который описал антисептическое действие хинина.

3.1. ВИДЫ  АНТИСЕПТИКИ 

В зависимости от принципа действия различают следующие виды антисептики.

Механическая антисептика 

Механическая антисептика предусматривает удаление микроорганизмов и нежизнеспособных тканей механическим путем: скальпелем, пинцетом, вымыванием струей антисептика под высоким давлением (гидропрессивная обработка) и др.

Туалет раны – позволяет существенно уменьшить количество бактерий в ране (на 70-80%) и производится при любой перевязке, оказании первой врачебной помощи, а также во всех случаях, когда невозможно произвести первичную хирургическую обработку.

Туалет раны включает выполнение следующих этапов.

1. Очищение кожи вокруг раны:

• удаление загрязненной повязки;

• обезжиривание и очистка кожи вокруг раны (эфир, нашатырный спирт и др.);

• удаление отслоившегося эпидермиса;

• дезинфекция и дубление кожи вокруг раны спиртовым раствором антисептика (йод, йодонат, йодовидон, йодопирон, хлоргексидина биглюконат, бриллиантовый зеленый и др.).

2. Очищение раневой поверхности: 

• удаление экссудата, сгустков крови с помощью марлевых шариков;

• промывание раны водным раствором антисептика (растворы фурацилина, гипохлорита натрия, перекиси водорода, озонированные растворы и др.);

• удаление свободно лежащих и слабофиксированных некротических тканей (пинцетом);

• удаление инородных тел.

3. Наложение асептической повязки.

Первичная хирургическая обработка (ПХО) – операция, которая производится с соблюдением всех принципов асептики и с применением адекватного обезболивания.

Показания – наличие глубокой случайной раны, если отсутствуют признаки ее инфицирования, а с момента получения травмы до поступления в стационар прошло не более 24 часов. Профилактическое назначение антибиотиков позволяет увеличить указанный срок до 48 часов.

Этапы ПХО. 

1. Рассечение раны и ревизия раневого канала.

2. Иссечение краев, стенок и дна раны; удаление гематом и инород­ ных тел.

3. Гемостаз.

4. Восстановление анатомической целостности органов и тканей (шов сосудов, нервов, сухожилий).

5. Завершение операции (по показаниям):

— ушивание раны наглухо;

— ушивание раны с ее дренированием;

— рану не ушивают.

Вторичная хирургическая обработка предусматривает проведение следующих этапов.

1. Некротомия (рассечение струпа) или некрэктомия (иссечение скальпелем или ножницами некротизированных и нежизнеспособных тканей).

2. Удаление инородных тел, гематом.

3. Вскрытие карманов и затеков.

4. Дренирование патологического очага.

Помимо указанных видов механической антисептики могут применяться и другие операции и манипуляции: вскрытие гнойников (абсцессов, флегмон и др.); пункции ограниченных гнойных очагов.

 Наиболее радикальным методом механической антисептики является удаление пораженного органа или участка мягких тканей: при поверхностных абсцессах или нагноившихся атеромах – удаление их единым блоком в пределах здоровых тканей; при гнойных воспалениях органов брюшной полости производят их резекцию или удаление (аппендэктомия – удаление червеобразного отростка при аппендиците; холецистэктомия – удаление желчного пузыря при холецистите и др.; пульмонэктомия удаление легкого при выраженном гнойно-воспалительном процессе /гангрена легкого/.

Физическая антисептика 

Физическая антисептика — уничтожение микроорганизмов с использованием методов физического воздействия.

Гигроскопичный перевязочный материал. На гигроскопических свойствах перевязочного материала, основано использование марлевых и ватно-марлевых дренажей. Действие их усиливается при применении гипертонических растворов (10% хлористого натрия, 25% магнезии и др.), но не все ткани переносят их воздействие, в некоторых случаях, они способствуют расширению зоны некроза. Другим неблагоприятным их свойством является то, что марлевые дренажи, особенно, при тугом тампонировании, подсыхают у выхода из раны и прекращают дренирующие свойства, более того, могут превратиться в пробку, задерживающую отток гноя и экссудата. Более эффективен «сигарообразный» дренаж, когда марлевый тампон вводят в срезанный «палец» от перчатки – при этом не происходит подсыхания краев тампона и дренирующая функция не нарушается.

Дренирование. На естественной текучести гноя основано применение резиновых или силиконовых дренажей: полосчатых, вырезанных из перчатки, трубчатых, перфорированных трубчатых (пассивное дренирование).

Более эффективным является применение вакуумных дренажей, когда они подсоединяются к обычному медицинскому грушевидному резиновому баллончику или вакуум-отсосу (активное дренирование).

Другим решением проблемы является использование проточно-промывного дренирования, когда с помощью системы перфорированных трубчатых дренажей производят постоянное промывание антисептиком раны или полости и эвакуацию отработанного раствора.

Применение сорбентов. Сорбционный способ лечения находит все более широкое распространение при лечении различных патологических гнойных очагов, наиболее часто используются углерод- или кремнийсодержащие вещества в виде порошка или волокон (полифепан; гелевин; энтеросорбенты и др.).

Технические средства, применяемые для физической антисептики (ультразвук, лазер, гидропрессивная обработка, ультрафиолетовое облучение, рентгенотерапия и др.).

Ультразвук (ультразвуковая кавитация) применяется при лечении ран, перитонита, эмпиемы плевры и др. В основе положительного действия метода лежит эффект колебания жидкости, способствующий быстрому отторжению некротизированных тканей, повышению антимикробного действия используемых антисептиков, улучшению микроциркуляции.

Лазеры (углекислотный, твердотельный) достаточно широко используются в гнойной хирургии. Преимуществами применения лазерных обработок раневых поверхностей являются выраженное антимикробное действие, возможность бескровного удаление некротизированных тканей.

Гидропрессивная обработка основана на использовании свойств высоконапорных микродисперсных потоков лекарственных растворов. Позволяет быстро и качественно очищать раны и гнойные полости от инородных и микробных тел, некротизированных тканей, инфильтрировать воспалительно-измененные ткани антисептическим раствором.

Для стимуляции регенераторных способностей тканей применяют разнообразные физиотерапевтические методы воздействия: микро­ волновую терапию – УВЧ, дециметроволновую, сантиметровую терапию; магнитотерапию; широко используют среднечастотный ультразвук, ультрафиолетовое их облучение. Высоким терапевтическим эффектом обладает электрофорез и синусоидальные модульные токи с антисептиками на очаг инфекции. Основное их действие заключается в улучшении микроциркуляции и рассасывании инфильтратов.

Химическая антисептика

Химическая антисептика основана на использовании химических препаратов, которые действуют на микроорганизмы бактериостатически, купируя процесс размножения, или бактериолитически, разрушая микроорганизмы (активны в отношении бактерий, бацилл, простейших, грибов). Эффективность антисептических препаратов зависит от изменчивости, антисептикорезистентности микрофлоры, что требует их постоянной смены. 

Фармакопея насчитывает до 30 тысяч наименований антисептических средств химического действия. Мы ограничимся освещением наиболее часто используемых и наиболее эффективных на сегодняшний день препаратов.

Отличие антисептиков от дезинфектантов чисто формальное: первые применяют для антимикробной санации поверхности тела человека или его полостей, вторые — для обработки окружающих предметов или выделений больного.

Группа галоидов. Активность галогенсодержащих антисептиков пропорциональна способности отщеплять элементарные галогены.

Из галоидов, фтор в чистом виде не используется из-за ядовитости, но широко применяется для активизации других антисептиков, т.к., введенный в молекулу атом фтора, значительно повыщает активность препарата.

Традиционными средствами дезинфекции являются хлорактивные препараты органической (тозилхлорамид натрия, хлорпроизводные циануровой кислоты и гидантоина) и неорганической (гипохлориты) природы. Многие хлорактивные препараты наряду с несомненными достоинствами имеют и ряд недостатков: недостаточная растворимость, низкая стабильность, резкий запах, способность раздражать слизистые оболочки глаз и верхних дыхательных путей, вызывать коррозию металлических поверхностей, разрушать и обесцвечивать ткани. Из неорганических соединений хлора низкой стабильностью отличается гипохлорит натрия (NaOCl). Повысить стабильность растворов гипохлорита натрия возможно путем добавления силиката натрия и сульфонола, силиката натрия и уксусной кислоты или ее солей, цитраля и других веществ. Ряд зарубежных фирм предлагает твердые формы гипохлорита натрия, наиболее стабильным из которых является пентагидрат гипохлорита натрия. К органическим соединениям хлора, используемым для дезинфекции, относят тозилхлорамид (хлорамин), хлорпроизводные циануровых кислот и гидантоина. Данные вещества обладают высокой антимикробной активностью и рядом других положительных качеств, однако слабо растворимы в воде. Для дезинфекции используют, как правило, их композиции – хлорцин, сульфохлорантин-Д. Хлорцин (включает хлоризоцианурат калия или натрия) содержит сравнительно небольшое количество активного хлора (10—15%), что позволяет применять его не только в лечебно-профилактических учреждениях, но и в домашних условиях. Хлорцин обладает активностью в отношении грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, дерматофитов, микобактерий туберкулеза, вирусов, спор. ДП-2 (основа – трихлоризоциануровая кислота) является не только бактерицидом, но и спороцидом – содержит до 45% активного хлора. Положительное свойство композиций – сохранение активности в широком диапазоне рН, что дает возможность использовать их при различной щелочности природной воды. Наиболее известным хлорпроизводным гидантоина является дихлорметилгидантоин. Примером композиции на основе дихлорметилгидантоина является сульфохлорантин-Д. За счет введения в состав препарата сульфонола растворимость дихлорметилгидантоина повышается до 2,5-2,9%. Бактерицидное действие распространяется как на грамположительные, так и на грамотрицательные микроорганизмы.

В широкой клинической практике из препаратов хлора, как асептические средства, используют также хлорную известь, водный раствор хлорамина, который может применяться не только как асептическое средство, но и как антисептик. Например, 0,5% раствор применяют для промывания плевральной полости при эмпиеме плевры; 1,5—2% раствор — для промывания гнойных ран и наложения на них повязок. Таблетки «Пантоцид» используют для обеззараживания воды (1 таблетка на 0,5 литра воды). Более концентрированные растворы (2—3 таблетки на 0,5 литра воды) применяют для промывания ран, наложения повязок на раны и ссадины, влагалищных спринцеваний.

Более широко (в основном из-за меньшей токсичности) используют препараты йода (йод, йодинол, йодонат, йодпирон, повидон-йодин, раствор Люголя).

Из соединений йода для дезинфекции наиболее широко используют йодофоры (С-280, веладин, иозан, супердип, дайазан и др.) – комплекс йода и носителя, представляющего собой высокомолекулярное соединение и поверхностно-активное вещество. Выраженное бактерицидное, туберкулоцидное, фунгицидное, вирулоцидное, спороцидное действия йодофоров обуславливает их применение в основ­ ном в качестве антисептиков и очень ограничено — для дезинфекции отдельных объектов. Их йодофоров широко известны йодопирон и йодонат, носителями йода в которых являются соответственно поливинилпирролидон и сульфонат, повидон-йод (содержит 1% активного йода). Для обеззараживания рук медицинского персонала на основе повидон-йода созданы композиции с сульфонолом и неонолом.

1—5% спиртовые растворы йода применяют для обработки ссадин, краев случайных ран, хотя их применение ограничено из-за ожогов. особенно у детей и блондинов. Для обработки операционного поля используют 1% растворы «Иодоната» и «Иодопирона». Для полоскания зева и полости рта применяют 1% раствор «Иодинола». Он может использоваться и для промывания уха, наложения повязок на раны, трофические язвы, ожоговые поверхности и отморожения, т.к. эффективно действует на большинство микроорганизмов.

Группа окислителей. Активность этой группы препаратов в последнее время возрастает, особенно кислорода, т.к. он является не только прямым антисептиком, но и еще обладает иммуностимулирующим и дезодорирующим действием.

3% растворы перекиси водорода используют и как асептик, для уборки помещений и обработки аппаратуры, и как антисептик — для промывания ран, полости рта, ушей, спринцеваний. Антимикробное действие слабое. Но высоко ценится вспенивающий эффект, при котором из ран и полостей вымываются гной и некротические ткани. Выраженным антисептическим действием обладает 3-6% раствор перекиси водорода, который применяют для дезинфекции использованных инструментов и шприцов, обработки помещений при генеральной уборке и др. Для местного лечения 6% раствор перекиси водорода применяют только при анаэробной инфекции.

Газообразный кислород используют для лечения гнойных ран, трофических язв, ожогов и др. (методика гнотобиологии, без избыточного давления кислорода). Более широко применяют гипербарическую оксигенацию (ГБО), с избыточным давлением кислорода в барокамере 1-3 атм. При этом достигается местная активизация процессов регенерации при воспалениях и атрофических изменениях, а также оказываются общее репаративное и иммуностимулирующее действия.

Перманганат калия должен применяться только ех tempo. Слабоокрашенные растворы используют для промывания ран, полостей, спринцеваний. Крепкие растворы применяют только наружно: для обработки свищей, язв, ушитых ран; местного лечения анаэробной инфекции, т.к. отмечается высокий прижигающий и дубящий кожу эффект.

Группа (соединений) солей металлов. Ртуть содержащие антисептики, из-за патоморфоза микрофлоры, потеряли клиническое значение. К сулеме, которая в 70-х годах считалась самым мощным антисептиком, микрофлора уже приспособилась и стала устойчивой.

В настоящее время из солей тяжелых металлов наиболее активными антисептиками являются препараты серебра. Растворы нитрата серебра (0,5-1,0%) применяют для промывания ран, полостей. спринцеваний, наложения повязок, полоскания горла и полости рта, в офтальмологии. 10% раствор используют для прижигания избыточных грануляций ран, обработки внутренних свищей, например, бронхиальных, легочно-плевральных и др. Широко применяют 1-2% мази для лечения гнойных ран, ожогов, отморожений. Препараты серебра сочетаются с другими антисептиками, например, сульфаниламидами («Аргосульфан»), что усиливает антисептическое воздействие этих мазей. Из других препаратов серебра, применяют растворы колларгола и протаргола (0,2—1%) для промывания глаз, мочевого пузыря, влагалищных спринцеваний, наложения повязок на раны и язвы. При рожистых воспалениях используют втирание 15% мази.

Сульфат меди в виде 0,25% раствора применяют: в офтальмологии – для лечения конъюнктивитов, блефаритов; в урологической и гинекологической практике – при уретритах, циститах, вагинитах и др. При пролиферативных воспалениях препарат подводят с помощью электрофореза. Но препараты меди являются очень слабыми антисептиками и действуют в основном только на кокковую микрофлору.

Препараты цинка практически не обладают антисептическим действием, но имеют высокий защитный и противовоспалительный эффект, поэтому, 0,25% растворы используют, с этой целью в офтальмологии, оториноларингологии, урологии, гинекологии. В хирургической практике в основном применяют мази и пасты оксида цинка (паста Лассара, «Новоциндол» и др.) для защиты кожи при свищах, лечения трофических язв, дерматитов, микозов (паста Теймурова).

Протаргол, колларгол — антисептические средства, обладающие выраженным вяжущим действием и предназначенные для наружного применения. Используются для обработки слизистых оболочек, про­ мывания мочевого пузыря.

Группа кислот. Из минеральных кислот широко применяют борную кислоту в виде 3% водных и спиртовых растворов, мазей, присыпок — для лечения гнойно-воспалительных процессов любой локализации, т.к. она активна против грамотрицательной микрофлоры, особенно, синегнойной палочки и протея.

Салициловая кислота и ее аналоги по общему и местному проти­ вовоспалительному действию считаются достаточно эффективными препаратами, в связи с чем находят широкое применение. Местно ее используют в виде 1% водных и спиртовых растворов, присыпок, 40% мазей. В хирургии, кроме противовоспалительного действия, особенно ценится ее кератолитический эффект отторжения некрозов и кожных разрастаний, поэтому она входит в состав всех противомозольных средств и многих противовоспалительных мазей. Органические кислоты (надоликсовую, пипемидиновую и др.) применяют очень широко, как местно, так и при общей антибактериальной терапии, они входят в состав многих лекарственных форм.

Группа спиртов. Спирты обладают высокими антисептическими свойствами. В медицине применяют только этиловый спирт, как в чистом виде в различных концентрациях, так и с антисептическими добавками (фурацилин, борная кислота, ацетилсалициловая кислота, хлоргексидин и др.), что усиливает его собственные антисептические свойства. Спирты широко используют для обработки рук, операционного поля, кожи больного при инъекциях, а также и для лечения заболеваний, особенно в дерматологии и оториноларингологии.

Концентрация спиртов имеет существенное значение. 96% спирт: обладает, преимущественно, коагулирующим действием на микробы и дубящим на кожу, сохраняя микрофлору в порах кожи. Поэтому, его применение как асептика не всегда оправдано и в последнее время ограничено вообще. 70% спирт глубоко проникает в кожу; действует на микробы бактериолитически; является проводником других антисептиков.

Для обработки рук хирургов нашли применение препараты АХД- 2000 (активные вещества этанол и эфир полиольной кислоты) и АХД- 2000-специаль (этанол, эфир полиольной кислоты, хлоргексидин).

Щелочи. Нашатырный спирт — антисептическое средство наружного применения. В настоящее время имеет ограниченное использование.

Группа фенолов. Карболовая кислота – сильное дезинфицирующее средство. В настоящее время применяется только в комплексе с другими препаратами (входит в состав присыпок и мазей). Тройной раствор — содержит 20 г формалина, 10 г карболовой кислоты, 30 г соды и дистиллированную воду (до 1 литра). Сильное дезинфицирующее средство. Используется для обработки инструментов, предметов ухода, холодной стерилизации режущих инструментов.

Группа альдегидов. Для альдегидов характерны бактерицидное, вирулицидное, фунгицидное и спороцидное действия, что позволяет отнести их к дезинфектантам высокого уровня. Из групп альдегидов в практике дезинфекции используются два вещества – формальдегид и глутаровый альдегид.

Формалин – 37% раствор формальдегида. Сильное дезинфицирующее средство. 0,5—5,0% растворы используются для дезинфекции перчаток, дренажей, инструментов. Эффективен в отношении эхинококка. Применяется также при фиксации препаратов для гистологи­ ческого исследования. В сухом виде применяется для стерилизации в газовых стерилизаторах, в частности, оптических инструментов. Лизол — сильное дезинфицирующее средство. 2% раствор использу­ ется для дезинфекции предметов ухода, помещений, замачивания загрязненных инструментов. В настоящее время применяется очень ограниченно из-за высокой токсичности.

Группа красителей. Сами по себе, красители являются слабыми анти­ септиками, действующими в основном на кокковую микрофлору. Их активность усиливается за счет растворителя — 70% спирта, хотя широко применяют и водные растворы. Препараты не раздражают ткани и слизистые, вызывают их подсущивание, что особенно важно при экссудативных воспалениях. Спиртовые (1—3%) растворы применяют для обработки краев ран, ссадин, язв. Водные растворы можно использовать в любой области, включая офтальмологию, но в разведении 1:5000.

Наиболее широко применяют бриллиантовый зеленый, метиленовый синий, этакридинлактат («Риванол»). Последний входит в состав мази Конькова.

Группа детергентов (поверхностно-активные вещества — ПАВ) (церигель, дегмин, дегмицид и др.) и гуанидинов (хлоргексидина биг- люконат, лактацид и др.).

Детергенты (мыла) являются активными антисептиками местного действия против всей микрофлоры, включая вирусы. Кроме того, они обладают местным антитоксическим действием, связывая токсины стафилококка.

Для обработки рук, операционного поля водный раствор «Дегмицида» — препарат разводят водой в 30 раз. Последний может использоваться для промывания и дренирования ран, лечения язв, поверхностных гнойных процессов. На основе детергентов готовят пленкообразующие препараты («Церигель»), мази («Этоний»), которые обладают местно анестезирующим действием и стимулируют заживление ран, язв, ссадин.

По способности ионизироваться в водных растворах ПАВ разделяют на катионные, анионные, амфолитные и неионогенные. В качестве самостоятельных дезинфектантов используют только катионные и амфолитные ПАВ (амфолан и др.). Амфолитные ПАВ имеют ряд преимуществ перед катионными — они малотоксичны, действуют на бактерии, грибы, вирусы, не утрачивают активности в присутствии жировых и белковых субстанций, не коррозируют металлы. ПАВ из всех других групп применяют как полезные добавки в составе композиционных дезинфицирующих средств.

Из группы гуанидинов наиболее широко применяют хлоргексидина биглюконат /гибитан/ («Пливасепт», «Сайдкс», «Виркон» и др.). Гибитан обладает широким спектром антибактериального действия, особенно спиртовые растворы. Концентрированные (готовят по инструкции в каждом случае) водные растворы применяют для дезинфекции и холодовой стерилизации инструментов (например, корнцангов, пинцетов, шпателей и других смотровых инструментов). 0,5% водные растворы используют для промывания ран, полостей (кроме глаз), спринцеваний, наложения повязок. Как асептики – для обработки рук, операционного поля и КОЖИ’для инъекций – применяют 0,5% раствор хлоргексидина биглюконата в 70% спирте. Метацид вызывает гибель грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, многих дерматофитов. Положительным качеством его является длительный эффект.

Группа сульфаниламидов. Сульфаниламиды являются достаточно сильными антисептиками в отношении кокковой и грамотрицательной микрофлоры. Их применяют местно – в растворах, мазях, аэрозолях, и для общего лечения гнойной инфекции — в таблетках и инъекционных формах.

По продолжительности действия, они делятся на 4 группы:

1) короткого действия («Стрептоцид», «Норсульфазол», «Сульфадимезин» и др.) – выводятся из организма в течение 6 часов;

2) среднего действия («Бисептол», «Гросептол», «Сульгин») – выводятся в течение 12 часов;

3) длительного действия («Сульфапиридазин»,«Сульфадиметоксин» и др.) – действуют в течение суток и являются наиболее активными при микрофлоре, устойчивой к антибиотикам;

4) препараты сверхдлительного действия («Сульфален» и др.) — в течение недели.

Кроме антимикробного действия, препараты активны против некоторых патогенных грибов и крупных вирусов, например, хламидий и других орнитовирусов. На мелкие вирусы (вирусы гриппа, аденовирусы) сульфаниламиды не действуют.

Производные хиноксалина. Препараты очень токсичны, поэтому в детской практике их не применяют. Но они высокоэффективны против любой микрофлоры и их применяют для лечения наиболее тяжелых гнойных воспалений. «Хиноксидин» применяют для общей терапии. «Диоксидин» используют местно — в виде 0,5—1% раствора для промывания гнойных ран и полостей, а также в виде 5% мази для повязок; при тяжелой гнойной инфекции, например, при сепсисе вводят и внутривенно до 100 мл в сутки.

Препараты нитрофурана. Препараты активны в большей степени против кокковой микрофлоры, крупных вирусов, простейших. Против грамотрицательной микрофлоры почти не действуют. Нетоксичны, не раздражают слизистые оболочки, поэтому применяются очень широко в различных фармацевтических формах: водных и спиртовых растворах фурацилина, мазей и аэрозолей («Фастин», «Лифузоль» и др.), таблеток («Фуразолидон», «Фурадонин» и др.) – для лечения мочеполовой и кишечной инфекции.

Фурацилин — антисептическое средство для наружного применения. Раствор 1:5000 – один из основных препаратов для промывания ран и полостей.

Фурадонин, фурагин, фуразолидон (уроантисептики) – химиотерапевтические средства, используемые в основном для лечения инфекции мочевыводящих путей.

Лифузоль — содержит фурацилин, линетол, смолы, ацетон, антисептическое средство для наружного применения. Наносится в виде пленки. Применяется для защиты послеоперационных ран и дренажных отверстий от экзогенной инфекции, лечения поверхностных ран.

Производные 8-оксихинолина. Препараты обладают широкой анти­ бактериальной, противогрибковой, антипаразитарной активностью, но довольно токсичны. Применяют местно («Хинозол») в виде присыпок, растворов, мазей для лечения гнойных процессов и ран. В урологии, для лечения мочеполовой инфекции, применяют: «Нитроксолин» (5-НОК), «Грамурин» и др. Для лечения кишечной инфекции используют: «Энтеросептол», «Ятрен», «Интестопан».

Производные нитроимидазола. Метронидазол (трихопол) — химиотерапевтическое средство широкого спектра действия. Препарат эффективен в отношении простейших, бактероидов, многих анаэробов. Препараты растительного происхождения. Находят широкое применение не только как антимикробные (для промывания ран, слизистых оболочек, обработки кожи), но и как местные противовоспалительные средства: «Хлорофиллипт», «Эктерицид», «Лизоцим», «Бализ», «Календула» и др.

Дегти, смолы. Ихтиол, нафталан — используется в виде мазей, обладает противовоспалительным действием.

Деготь березовый — антисептическое средство наружного применения. Входит в состав мази Вишневского, используемой для лечения гнойных ран. 

Биологическая антисептика 

Биологическая антисептика может быть разделена на два основных вида:

• биологическая антисептика прямого действия, когда используются лекарственные препараты биологического происхождения, оказывающие преимущественно непосредственное воздействие на микроорганизмы;

• биологическая антисептика, основанная на использовании лекарственных средств, оказывающих опосредованное действие путем стимуляции тех или иных защитных механизмов макроорганизма в борьбе с инфекцией.

К биологической антисептике прямого действия можно отнести: 

• применение антибиотиков;

• применение препаратов для пассивной иммунизации организма (лечебные сыворотки, бактериофаги, гипериммунная плазма, антитоксины и др.);

• энзимов, которые можно разделить на протеолитические ферменты животного происхождения (трипсин, плазмин, химотрипсин, химопсин, рибонуклеаза), растительного происхождения (папаин, дебрицин, терралитин), микробные ферменты (стрептогеназа, стрептодорназа, коллагеназа);

• методы экстракорпоральной детоксикации.

К биологической антисептике непрямого действия относятся: 

• применение препаратов, стимулирующих специфический иммунитет (вакцины, анатоксины);

• препараты, стимулирующие неспецифический иммунитет [интерлейкины, интерфероны, лизоцим, левамизол, препараты вилочковой железы (тималин, Т-активин), продигиозан, нуклеинат натрия и др.];

• методы, стимулирующие неспецифическую резистентность макроорганизма (УФО аутокрови, лазеротерапия, переливание препаратов крови, витаминотерапия и др.).

Основные группы антибиотиков: 

• пенициллины (бензилпенициллина натриевая и калиевая соли, оксациллин, бициллин, ампиокс и др.);

• стрептомицины (стрептомицин);

• тетрациклины (тетрациклин, метациклин и др.);

• макролиды (эритромицин, олеандомицин и др.);

• аминогликозиды (гентамицин, канамицин, амикацин и др.);

• левомицетины (левомицетин); 

• рифампицины (рифампицин);

• противогрибковые антибиотики (леворин, нистатин и др.);

• полимиксин В;

• клавулонат калия;

• линкозамины (линкомицин, клиндамицин);

• цефалоспорины (цефазолин, цефтриаксон, кейтен и др.);

• фторхинолоны (ципрофлоксацин, офлоксацин и др.);

• карбапенемы (тиенам, меропенем);

• гликопептиды (ванкомицин и др.).

Антибиотики – это вещества микробного происхождения или синтетические, обладающие бактерицидными действием в  отношении определенных групп микроорганизмов. В настоящее время эти лекарственные вещества широко используются для лечения и профилактики хирургической инфекции. Следует выделить осложнения, возникающие в процессе лечения любой группы антибиотиков. Аллергические реакции –кожные проявления ( сыпь зуд, дерматиты), отек Квинке, нарушения дыхания, бронхоспазм и развитие анафилактического шока. Токсическое проявления на внутренние органы – нарушение функции ЖКТ, печени, почек, кроветворной и неравной систем. Дисбактериоз при длительном применении антибиотиков, особенно у детей. Формирование устойчивых штаммов микроорганизмов – самое частое осложнение, которое исключает возможность дальнейшего использования антибиотиков. Для профилактики этих осложнений необходимо соблюдать основные правила лечения антибиотиками:

– тщательный сбор аллергологического анамнеза, проведение кожно-аллергической пробы ( пенициллины);

– применение антибиотиков строго по показаниям;

– определение чувствительности микробов  к антибиотику до начала лечения;

– назначение максимальных или субтоксических (при тяжёлых инфекциях) доз препарата;

– соблюдение кратности введения препаратов в течение суток;

– лечение курсами от 5-7 до 14 дней;

– проведение смены антибиотика при его неэффективности;

– использование синергизма препаратов при назначении комбинаций антибиотиков, а так же антибиотиков с другими противомикробными препаратами;

– при длительных курсах антибиотикотерапии назначение противогрибковых препаратов (нистатин, леворин);

– выбор оптимального пути введения антибиотиков.

Смешанная антисептика 

Использование комбинации различных методов антисептики. В клинической практике смешанная антисептика применяется наиболее часто.                                          

ВОПРОСЫ И ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ

1. Дайте определение хирургической инфекции
2. Назовите виды возбудителей хирургической инфекции
3. Перечислите источники хирургической инфекции
4. Каковы пути экзогенного инфицирования раны?
5. Каковы пути эндогенного инфицирования раны?
6. Назовите местные признаки воспаления при хирургической инфекции
7. Перечислите местные признаки  воспаления при хирургической инфекции
8. Перечислите методы профилактики контактного пути экзогенного инфицирования раны
9. Перечислите методы профилактики имплантационного пути инфицирования раны
10. Дайте определение асептики
11. Приведите примеры организационного метода асептики
12. Назовите виды уборки операционной
13. Какие вы знаете средства для генеральной уборки операционной, перевязочной?
14. Расскажите о методах обработки рук медицинского персонала
15. Перечислите последовательность гигиенического мытья рук
16. Назовите растворы для дезинфекции клеенок в перевязочной загрязнённых кровью
17. Приведите пример  химического метода асептики
18. Приведите примеры физического метода асептики
19. Каковы режимы работы автоклава?
20. Расскажите о ведущем методе стерилизации операционного белья
21. Расскажите о методе стерилизации одноразовых шприцев, систем для переливания крови
22. Расскажите о ведущем методе стерилизации перчаток
23. Назовите виды укладок
24. Перечислите методы обработки хирургических инструментов
25. Какие ингредиенты необходимы для приготовления антикоррозийной смеси?
26. Расскажите о ведущем методе стерилизации хирургических инструментов
27. Назовите препараты, используемые для холодной стерилизации хирургических инструментов
28. Какова  цель  азопирамовой пробы?
29. Назовите условия, необходимые для выполнения азопирамовой пробы
30. Каков режим работы сухожарового шкафа?
31. Перечислите физические методы контроля качества стерилизации
32. В чем состоит химический метод контроля качества  стерилизации?
33. В чем состоит прямой метод контроля качества стерилизации?
34. Перечислите этапы хирургической антисептики рук первомуром
35. Расскажите о современных методах стерилизации шовного материала
36. Расскажите о сроках сохранения стерильного материала в биксе КСК?
37. Расскажите о сроках сохранения  стерильного материала в биксе КСПФ?
38. Расскажите о сроках сохранения стерильности инструментов в крафт-пакете?
39. Перечислите этапы обработки операционного поля на операционном столе
40. Дайте определение антисептики
41. Перечислите методы антисептики
42. Приведите примеры механической антисептики
43. Почему механические методы являются ведущим в антисептике?
44. Приведите примеры физической антисептики
45. Какое свойство перевязочного материала используется в физической антисептики?
46. Перечислите методы дренирования ран.
47. Каково назначения дезинфицирующих веществ в антисептике?
48. Какое назначение химиотерапевтических веществ а антисептике?
49. Перечислите основные группы химических антисептиков
50. Перечислите антисептические препараты группы галоидов
51. Перечислите антисептические препараты группы детергентов
52. Перечислите антисептические препараты группы окислителей
53. Перечислите антисептические препараты, созданные на основе этанола
54. Перечислите антибиотики широкого спектра действия
55. Перечислите противогрибковые антибиотики
56. Перечислите возможные осложнения при лечении антибиотиками
57. Назовите основные правила лечения антибиотиками
58. Перечислите протеолитические ферменты
59. Назовите комбинированный препарат, созданный на основе протеолитического фермента
60. Перечислите сыворотки, используемые для профилактики и лечения столбняка.

ТЕСТЫ

Выбери правильный ответ.

1. Асептика-это:

а) Уничтожение болезнетворных микробов;

б) Уничтожение всего живого;

в) Комплекс мероприятий, направленных на уничтожения микробов в ране;

г) Комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану

2. Антисептика-это

а) Уничтожение болезнетворных микробов

б) Уничтожение всего живого

в) Комплекс мероприятий направленных на уничтожение микробов в ране

г) Комплекс мероприятий , предупреждающих попадание микробов в рану, организм

3. Индикатор стерильности при автокловировании

а) Аскорбиновая кислота

б) Бензойная кислота

в) Янтарная кислота

г) Винно-каменная кислота

     4. индикатор стерильности перевязочного материала:

а) Мочевина

б) Тиомочевина

в) Бензойная кислота

г) Винно-каменная кислота

    5. Ведущий метод стерилизации хирургических инструментов по ОСТу:

а) Обжигание

б) Пар под давлением

в) Текущий пар

г) Сухой жар

    6. Самый надежный метод контроля качества стерилизации:

а) Физический

б) Химический

в) Биологический

г)  Бактериологический

    7. Современный метод стерилизации кетгута по ОСТу:

а) Автоклавирование

б) Ионизирующие излучения

в) Первомур

г) Кипячение

    8. ПХО ран лежит в основе антисептики:

а) Химической

б) Биологической

в) Механической

г) Физической

     9.Дренирование ран лежит в основе антисептики:

а) Химической

б)  Физической

в) Механической

г) Биологической

     10. Использование протеолитических ферментов лежит в основе антисептики:

а) Механической

б) Физической

в)  Химической

г) Биологической.

Выберите несколько правильных ответов

11. Источники экзогенной инфекции:

а) Бациллоноситель золотистого стафилококка

б) Медицинский персонал с ОРВИ

в) Пациент с ОРВИ

г) Пациент с гнойничковыми заболеваниями кожи

д) Нестерильные инструменты

12. Источники эндогенной инфекции:

а)  Хронический гепатит у пациента

б) Медицинская сестра- носитель, австралийского антигена

в) Гнойничковые заболевания кожи пациента

г) Гнойничковые заболевания кожи хирурга

д) Вживленный кардиостимулятор

13. Современные методы стерилизации шелка:

а) Текучий пар

б) Пар под давлением

в) Хлоргексидин

г) Первомур

д) Раствор Люголя

14. Современные методы стерилизации инструментария с оптикой:

а) Сайдекс

б) Кипячение

в) Автокловировании

г) Сухой жар

д) 6% раствор перекиси водорода

15. Современные препараты для хирургической антисептики рук по ОСТу:

а) Хлорамин Б-0,25 %

б) Первомур -2,4%

в) Гибитан -0,5 %

г) АХД- 2000

д) Нашатырный спирт 0,5%

16. Физические методы асептики:

а) УФО помещений

б) УФО крови

в) Пар под давлением

г) Ионизирующее излучение

д) Сухой жар

17.Физические методы антисептики:

а) Ультразвук

б) Некрэктомия

в) Дренирование

г) Изотический раствор натрия хлорида

д) Гигроскопичность марли

18. Профилактика имплантационной инфекции включает:

а) УФО помещений

б) Стерилизацию шовного материала

в) Стерилизацию эндопротезов

г) Стерилизацию операционного белья

д) Хирургическую антисептику рук

19. Условия для выполнения азопирамовой пробы:

а) Хорошее оснащение

б) Холодные инструменты

в) Свежий реактив

г) Экспозиция 1 мин

д) Экспозиция 2 мин

20.Концентрации растворов перекиси водорода, используемых в хирургии

а)1 %

б)3%

в)4%

г)6%

д)33%

Дополните.

21. Начальная температура моющего раствора на основе « Биолота» …..0С, экспозиция …мин

22. Начальная температура моющего раствора на основе СМС….0С, экспозиция …мин

23. Для приготовления 1 л моющего раствора берется…мл 33% раствора пергидроля, СМС …г и воды…мл

24. Универсальный контроль качества предстерилизационной очистки……

25.Химическая стерилизация шелка проводится …% первомуром в течение ..мин, заем он дважды отмывается стерильным..% раствором натрия хлорида по …мин.

26. Химическая стерилизация шелка проводится …%

27. Первомур- это смесь….и……

28. При давлении 1,1 атм, в автоклаве температура…0С, экспозиция….мин, контроль качества стерильности……

29. При давлении 2 атм, в автоклаве температура…..0С, экспозиция …мин, контроль качества стерильности….

30. В предоперационной медицинская сестра надевает….и…

Установите соответствие ( каждый ответ может использоваться один, несколько раз или ни одного)

31.Группа антисептиков:                              Препараты:

1. окислители        а) гибитан

2. Галоиды        б) карболовая кислота

3. Антибиотики        в) леворин

4.Фенолы        г )йодопирин

                                                             Д) перманганат калия

                                                             Е)хлорамин Б

32. Группа антисептиков:        Препараты:

1) соли тяжелых металлов        а) бриллиантовый зеленый

2) кислоты        б) перекись водорода

3) нитрофураны        в) нитрат серебра

4) красители        г) перманганат калия

        Д) фурацилин

        Е) борная кислота

33. Группа антисептиков:        Препараты:

1) Галоиды        а) протаргол

2) Соли тяжелых металлов        б) хлоргексидин

3) Антибиотики        в)хлорамин

4) Протеолитические ферменты        г) раствор Люголя

                                                             Д) трипсин

                                                             Е) нистатин

34.Группа антисептиков:        Препараты:

1) Дегти                                   а) мазь Вишневского

2) сыворотки        б) линимент синтомицина

3) Антибиотики        в) гибитан

4) Детергенты        г) ПСЧИ

        Д) церигель

        Е) пергидроль

35. Вид антисептики:         Способы борьбы с инфекцией:

1) Механический        а) УФО раны

2) Физический        б) УФО помещений

3) Химический        в) ПХО

4) Биологический        г) туалет раны

        Д) мазь Вишневского

        Е) трипсин

36. Метод стерилизации:         Температура:

1) Сухой жар 60 мин        а) 1000С

2) Сухой жар 150 мин        б) 1200С

3)  Пар под давлением 1,1 атм        в) 132 С

4) Пар под давлением 2 атм        г) 140 С

        Д) 160 С

        Е) 180 С

37. Стерилизуемый предмет:        Метод стерилизации:

1) Перчатки        а) автоклавирование 2атм

2) Шелковые нити        б) автоклавирование 1,1 атм

3) Операционное белье        в) сухой жар 160 С

4) Коррозионно-нестойкие инструменты        г) сухой жар 180 С

        д) раствор первомура

        е) раствор перекиси водорода 6%

38. Стерилизуемый предмет:        Контроль стерильности:

1) Хирургический инструмент        а) мочевина

2) Перчатки        б) Тиомочевина

3) Перевязочный материал        в) азопирамовой проба

4) Операционное белье        г) бензойная кислота

        д) виннокаменная кислота

        е) аскорбиновая кислота

39. Стерилизуемый предмет:        Метод стерилизации:

1) Перевязочный материал         а) сухой жар 180 С

2) Перчатки        б) ионизирующее излучение

3) Оптические инструменты        в) Автоклавирование 1,1 атм

4) Шелковые нити        г) автокловировании 2 там

        д) раствор перекиси водорода 6%

        е) Сайдекс

40. Путь распространения:        Способ профилактики инфекции:

1) Воздушно- капельный        а) стерилизация шовного материла

2) имплантационный        б) лечение кариозных зубов пациент

3) Контактный        в) лечение кариозных зубов персона

4) Гематогенный        г) ношение маски

        д) влажная уборка операционной

        е) хирургическая антисептика рук.

Установите последовательность действий

41. Подготовка бикса для сдачи в ЦСО:

а) промаркировать КСК

б) проверить герметичность КСК

в) протереть спиртом

г) выстлать дно и стенки простыней

д) проверить целостность КСК

е) закрепить пояс в положении с открытими отверстиями

ж) уложить материал и разместить индикаторы стерильности.

42. Дезинфекция инструментов:

а) промыть под проточной водой

б) отмыть от крови в накопителе

в) обеззаразить накопитель

г) замочить в накопителе

д) замочить в дезинфицирующем растворе

43. Предстерилизационная очистка инструментов:

а) высушить инструменты

 б) ополоснуть дистиллированной водой

в) промыть в моющем растворе

г) выборочно провести азопирамовую пробу

д) отмыть под проточной водой

е) погрузить в моющий раствор

44. Техника гигиенического мытья рук:

а) правая лодонь над левой и наоборот

б)вращательное трение правого большого пальца, охваченного  левой ладонью и наоборот.

В) ладонь к ладони.

Г) ладонь к ладони пальцы переплетены.

Д) вращательное трение назад и вперед пальцами правой руки по ладони левой руки и наоборот.

Е) внутренними поверхностями пальцы переплетаются с пальцами противоположной ладони.

45. Хирургическая антисептика рук первомуром:

А) высушивание стерильной салфеткой.

Б) обработка первомуром.

В) ополаскивание рук водой.

Г) мытье рук с мылом.

Д) надевание стерильных перчаток.

Е) повторное высушивание стерильной салфеткой.

46. Хирургическая антисептика рук хлоргексидином:

А) надевание стерильных перчаток:

Б) мытье рук с мылом

В) обработка тампоном, смоченным хлоргексидином

Г) ополаскивание под проточной водой

Д) повторная обработка тампоном, смоченным хлоргексидином

Е) высушивание стерильной салфеткой

47. Подготовка операционного поля к экстренной операции:

А)обработка водным раствором антисептика

Б) частичная санитарная обработка

В)Сухое бритье

Г) обработка спиртом

Д) высушивание

48. Химическая стерилизация шелка:

А) поместить нити в стерильное полотенце

Б) стерильный бикс выстлать стерильным полотенцем

В) поместить нити в первомур

Г) дважды отмыть в стерильном физиологическом растворе натрия хлорида

Д) промаркировать бикс

49. Накрытие стерильного стола:

А) расстелить последовательно пять простыней

 Б) Расстелить клеенку

В) скрепить бельевыми цапками два слоя 2-й и один слой 3-й простыней

Г) проверить индикатор стерильности

Д) закрепить корнцанги на 5-й простыне

Е) разложить стерильные инструменты

Ж) промаркировать стол.

50. Инструментальная перевязка чистой послеоперационной раны:

А) снять остатки клеола бензином

 Б) Высушить кожу вокруг раны

Г) обработать кожу вокруг раны водным раствором антисептика

Д) снять загрязненную повязку с поверхности раны

Е) обработать рану спиртовым раствором антисептика:

Ж) наложить клеоловую повязку

ОТВЕТЫ К ТЕСТАМ

1.г; 2.в; 3.б; 4.а; 5.г; 6.г; 7.б; 8.в; 9 б; 10 г; 11 а,б; 12 а,в; 13 б-г; 14 а,д; 15-б,в,г;

16 а,в,г,д; 17 а,в,д; 18б,в; 19 б,в,г; 20 б,в,г,д; 21 40-45 С 15 мин; 22 50-55С 15 мин; 23 15 мл, 5 гр, 980мл; 24 азопирамовую проба; 25 180 мин, 360 мин; 26 4,8%, 15 мин, 0,9 % 5 мин; 27 пергидроля и муравьиной кислоты; 28 120 С , 45 мин, бензойная кислота; 29 132 С , 20 мин мочевина; 30 маску и бахилы; 31 1-д,2-г,е, 3-в, 4-б; 32 1-в,2-е,3-д,4-а; 33 1-в,г, 2-а, 3-е,4-д; 34 1-а,2-г 3-б,4-в,д; 35 1-в,г,2-а, 3-д,4-е; 36  1-е,2-д,3-б,4-в; 37 1-б,2-а,д, 3-а,4-г; 38 1-б,д,2-г,3-а,4-а; 39 1-г,2-в,3-д,е, -б,г; 40 1-в,г,д, 2-а,3-е,4-б; 41  д-б-в-е-г-ж-а; 42 г-б-д-в-а;43 е-в-д-б-а-г; 44 в-а-г-е-б-д; 45 г-в-а-б-е-д; 46 б-г-е-в-д-а;47 б-а-д-в-г; 48 в-г-б-а-д; 49 г-б-а-д-в-е-ж; 50 в-а-д-г-б-е-ж

СПИСОК  ЛИТЕРАТУРЫ:

1. Учебное пособие «Основы ухода за хирургическими больными» А.А. Глухов, А.А. Андреев, В.И. Болотских, С.Н. Боев., М., «ГЭОТАР-Медиа», 2008.
2. Учебное пособие «Хирургия с основами реаниматологии. Общая хирургия» З.В. Дмитриева, А.А. Кошелев, А.И. Теплова, СПб., «Паритет», 2003.
3. «Справочник операционной и перевязочной сестры» Б.Д. Комарова, М., «Медицина», 1985.
4. «Хирургические болезни с уходом за больными» С.Н. Муратов, М., «Медицина», 1976.