Ветеринарно-санитарные мероприятия на птицефабриках
Ветеринарно – санитарные мероприятия
Защита птицефабрики от проникновения возбудителей заразных болезней и предупреждение их распространения за пределы предприятия обеспечивается проведением комплекса организационно – хозяйственных и ветеринарно – санитарных мероприятий, специфической профилактики и диагностики инфекционных болезней. Необходимость неукоснительного соблюдения режима предприятия закрытого типа в последние годы приобрела особую остроту в связи с ситуацией по гриппу птиц, основой борьбы с которым в промышленном птицеводстве являются ветеринарно – санитарные мероприятия, а не специфическая профилактика.
Общие требования по ветеринарно – санитарной защите птицеводческих предприятий
Птицеводческие предприятия функционируют в режиме предприятий закрытого типа. Категорически запрещен вход в производственные зоны посторонних лиц, а также въезд любого вида транспорта, не связанного с обслуживанием хозяйства.
Обслуживающему персоналу разрешается вход и выход только через ветеринарно – санитарный пропускник с полной сменой одежды и обуви и прохождением гигиенического душа, а въезд транспорта – через постоянно действующие дезбарьеры и дезинфекционные блоки. Все другие входы в производственные зоны птицеводческого предприятия должны быть постоянно закрыты.
Посещение птицефабрики посторонними лицами допускается только по разрешению главного ветеринарного врача предприятия. Эти лица обязаны пройти санитарную обработку в ветеринарно – санитарном пропускнике и надеть спецодежду и обувь. Для этой цели в санпропускнике хранят специальный резерв халатов и обуви. Всем лицам, кроме обслуживающего персонала, входящим на территорию птицефабрики, категорически запрещается соприкасаться с птицей и кормами.
У входа в птичники, инкубаторий, цех убоя и переработки, кормосклады для дезинфекции обуви оборудуют дезинфекционные кюветы во всю ширину прохода, длиной 1,5 м, которые регулярно заполняют дезинфицирующим раствором.
В каждом птицеводческом помещении, кормоцехе (кормоскладе) вентиляционные отверстия оборудуют рамами с сеткой во избежание залета дикой птицы, а также принимают меры для отпугивания дикой птицы и осуществляют постоянную борьбу с мышевидными грызунами.
Во избежание заноса возбудителей заразных болезней на территорию птицефабрики рабочим и служащим этого предприятия категорически запрещается содержать птицу любых видов в личных хозяйствах.
Запрещается содержать на территории птицефабрики кошек и собак, кроме сторожевых собак, находящихся на привязи возле помещения охраны.
Комплектование поголовья осуществляют из одного источника – племенного птицеводческого предприятия (родительского стада кур), благополучного по заразным болезням птиц. Инкубационные яйца и птицу принимают на основании документов, подтверждающих благополучие предприятия – поставщика по инфекционным болезням птиц.
Птичники комплектуют одновозрастной птицей. При комплектовании поголовья многоэтажных и сблокированных птичников максимальная разница в возрасте птицы не должна превышать для молодняка 7 дней, для взрослой птицы – 15 дней.
Для обслуживания птиц закрепляют постоянный персонал, прошедший медицинское обследование и соответствующую зоотехническую и ветеринарную подготовку.
Перед размещением очередной партии птиц при клеточном содержании минимальный межцикловый профилактические перерыв составляет три недели. Дни профилактического перерыва исчисляются с момента отправки последней партии птиц из помещения до начала новой загрузки, при этом птицеводческое помещение должно находиться свободным после окончания дезинфекции не менее 4 дней.
В инкубатории предусматривается ежегодный профилактический перерыв, составляющий не менее 6 дней между последним выводом молодняка и первой закладкой яиц после перерыва.
Дезинфекцию проводят в соответствии с действующей инструкцией по проведению ветеринарной дезинфекции, дезинвазии, дезинсекции и дератизации и осуществляют контроль за ее качеством.
Кормление птиц должно осуществляться полнорационными комбикормами заводского изготовления, прошедшими термическую обработку. В случае приготовления кормосмеси непосредственно на предприятии предусматривать проведение термообработки на месте.
На предприятиях проводят выбраковку больной и подозрительной по заболеванию птицы, которую убивают и обрабатывают отдельно от здоровой.
Транспортировку птицы и продукции осуществляют в чистой заранее продезинфицированной таре, специально для этой цели предназначенным транспортом.
Ветеринарным специалистам птицефабрик совместно с представителями местных учреждений государственной ветеринарной службы рекомендуется принимать меры по созданию в районах расположения птицеводческих предприятий иммунных зон по заболеваниям, представляющим угрозу для птицефабрик, путем проведения вакцинации птицы, находящейся в личных хозяйствах граждан.
Специфическая профилактика инфекционных болезней
В обязательном порядке осуществляется профилактическая вакцинация поголовья кур против ньюкаслской болезни, инфекционной бурсальной болезни, болезни Марека. Вакцинации против этих болезней составляют “скелет” любой программы иммунопрофилактики. Неотъемлемой частью схемы вакцинации будущих несушек являются также прививки против инфекционного бронхита кур, синдрома снижения яйценоскости – 76, инфекционного энцефаломиелита, реовирусного теносиновита.
С учетом эпизоотической ситуации в регионах и на предприятиях и результатов диагностических исследований дополнительно может осуществляться иммунизация птицы против инфекционного ларинготрахеита, оспы птиц, синдрома гидроперикардита кур, инфекционной анемии, пневмовирусной инфекции (ринотрахеита индеек), пастереллеза, респираторного микоплазмоза.
Для иммунизации птиц используют живые и инактивированные вакцины, зарегистрированные в РФ, в соответствии с наставлениями по их применению. После проведения профилактических прививок в установленные сроки необходимо контролировать у птицы напряженность поствакцинального иммунитета с использованием серологических реакций (РТГА, РДП, ИФА и др.). В случае получения неудовлетворительного результата принимать неотложные меры по ревакцинации птицы, а также по корректировке схемы вакцинопрофилактике.
Болезнь Марека. Создание вакцины на основе герпесвируса индеек (3 серотип) было первой успешной попыткой иммунопрофилактики этого заболевания. С середины 90 гг. и по настоящее время широко используется бивалентная вакцина из штаммов 2 и 3 серотипов. Потенциал такой вакцины во многих хозяйствах пока не исчерпан, однако появившиеся в последнее время высоковирулентные штаммы вируса болезни Марека способны вызывать значительный отход вакцинированной птицы. В таких случаях адекватную защиту создают вакцины из аттенуированного вируса 1 серотипа (обычно штамм “СVI – 988” или “Риспенс”) или ассоциированные вакцины на основе 1 и 3 серотипов вируса.
Эволюцию полевого вируса надо отличать от элементарной небрежности при проведении вакцинации, транспортировке, хранении и выборе вакцины. В будущем при ухудшении ситуации стратегия иммунопрофилактики будет сводиться к эмпирической подборке разных сочетаний серотипов для двух одновременных инъекций в суточном возрасте и возможному вводу ревакцинации. Если наряду с взрослой птицей на территории хозяйства выращивают бройлеров, вакцинация бройлеров как потенциального резервуара полевых вирусов болезни Марека обязательна.
ПЦР – диагностика позволяет обнаруживать в патматериале участки геномов вирусов всех трех серотипов. Это имеет принципиальное значение для диагностики и контроля проведенной вакцинации.
Определенной сложностью сегодня является дифференциация болезни Марека от лейкоза, т. к. имеет место тенденция к проявлению патологоанатомических признаков болезни Марека в более старшем возрасте, а лейкоза – в более раннем. Интерпретация результатов серологических исследований на лейкоз затруднительна, т.к. антиген вируса можно обнаружить как у больных, так и у здоровых птиц. Известно о взаимовлиянии возбудителей лейкоза и болезни Марека на проявление неопластических болезней. Борьба с лейкозом возможна только на уровне селекционной работы в племенных хозяйствах, поэтому в ситуации роста случаев опухолевых болезней рекомендации по специфической профилактике болезни Марека клеточно – ассоциированными вакцинами 1 и 3 серотипов остаются наиболее приемлемыми.
Болезнь Ньюкасла (НБ). Это заболевание регистрируется на всех континентах, относится к особо опасным и наносит огромный экономический ущерб. Меры борьбы с НБ основаны на использовании живых и инактивированных вакцин, создающих достаточный уровень иммунологической защиты, предотвращающий приживляемость и диссеминацию в организме привитой птицы полевых высоковирулентных штаммов вируса.
Одной из главных особенностей возбудителя является высокая вариабельность изолятов по степени патогенности для цыплят при сохранении их антигенного родства, что значительно облегчает серодиагностику. Время первой иммунизации и последующих ревакцинаций определяют с помощью РТГА в соответствии с действующей инструкцией, т.е. если титр антител 1:8 и выше обнаружен менее чем в 80 % исследованных проб. Серологические исследования – РТГА – являются важнейшим инструментом для ветспециалистов и позволяют по величине, однородности и динамике титров антител дифференцировать постинфекционный и поствакцинальный иммунитет.
Существуют проблемы с выбором препарата, доведением дозы и полным охватом поголовья при применении живых вакцин. Не следует относить к поствакцинальным титры антител выше 1:4096, или даже 1:2048, после однократной вакцинации методом выпаивания. Низкое качество питьевой воды в птичниках, негативно влияющее на сохранность вакцинного вируса, заставило некоторые хозяйства применять только индивидуальные методы иммунизации (окулярно или назально), что позволило добиваться стабильных положительных результатов вакцинации.
Высокие титры антител к вирусу НБ после применения инактивированных вакцин не должны пугать ветеринарных специалистов, что случается время от времени в хозяйствах и областных ветеринарных лабораториях. В таких случаях уровень антител вполне может превышать отметку 1:4096, и важно отслеживать динамику их снижения, которая в идеале должна копировать динамику возрастного снижения яичной продуктивности.
В некоторых случаях на ранее неблагополучных по НБ птицефабриках и в эндемично неблагополучных регионах альтернативой применению живых вакцин из мезогенных штаммов, обладающих высокой реактогенностью, является комбинированное использование для иммунизации живых и инактивированных вакцин. Прирост титров антител в парных сыворотках более чем в 2 – 4 раза (или на 1 – 2 лог2) в период содержания промышленных несушек с учетом того, что максимальный уровень антител бывает через 1 месяц после применения инактивированной вакцины на переводе, указывает на контакт птиц с полевым высоковирулентным вирусом. Полевой вирус не вызывает при этом массовой гибели поголовья благодаря выраженному поствакцинальному иммунитету, однако способен привести к временным снижениям яичной продуктивности.
В таких случаях целесообразно вводить дополнительные иммунизации ремонтного молодняка начиная с суточного возраста инактивированной вакциной параллельно с живой. Дозу инактивированной вакцины для цыплят раннего возраста можно уменьшить до 0,2 – 0,3 мл ввиду их низкой живой массы. Кроме того, следует ввести дополнительные вакцинации взрослой птицы живой вакциной из штамма Ла Сота с интервалом 1 – 1,5 месяца, начиная с прививки интраназальным (окулярным) способом во время перевода во взрослое стадо, параллельно с инактивированной 3 – валентной вакциной. Последующие ревакцинации желательно проводить методом выпаивания, чтобы не подвергать птицу стрессу во время продуктивного периода. Данная мера позволит задействовать дополнительные механизмы иммунной системы птиц, а именно: клеточный и местный иммунитеты слизистых оболочек, что наряду с поствакцинальным гуморальным иммунитетом позволит надежно блокировать ворота инфекции – респираторный и пищеварительный тракты.
Дифференциацию вакцинных штаммов от полевых высоковирулентных можно в настоящее время проводить с помощью молекулярно – биологических методов.
Мероприятия по контролю НБ регламентированы Ветеринарным законодательством и Методическими указаниями (1997 г). Наиболее надежна для условий РФ вакцина из штамма Ла Сота.
Применение более “мягких” вакцин, направленное на снижение возможных поствакцинальных реакций, весьма рискованно для российских птицефабрик, поскольку не обеспечивает эффективной защиты поголовья.
Инфекционный бронхит кур (ИБК). В зависимости от распространенного варианта вируса за рубежом используют вакцины против серотипов Массачусетс, Арканзас, Коннектикут, JMK, D – 207, D – 212. В последние годы широкое применение нашла вакцина из штамма 4/91 (серотип 793В). Вирус этого серотипа был причиной заболевания бройлеров в Великобритании и других странах Европы. Известные вакцины не обеспечивали защиту против этого штамма. Также в западноевропейских странах экономическую значимость приобрели новые серотипы “Италия 02” и китайский QX. В настоящее время мировая наука придерживается мнения, что погоня за созданием новых вакцин, гомологичных стремительно появляющимся вариантным штаммам вируса, неконструктивна, и стратегия борьбы в обозримом будущем будет базироваться на использовании традиционных вакцин и оптимизации общепринятых методов их применения.
В России циркулирует в основном серотип Массачусетс, и для профилактики ИБК используют вакцины из этого серотипа. Иммунный ответ на живые вакцины выражен слабо. Основным критерием благополучия следует считать отсутствие характерных для заболевания фибринозных пробок в нижней части трахеи и магистральных бронхах у цыплят до 1 – месячного возраста и отсутствие антител в высоких титрах (выше 5 тыс. в ИФА) у молодняка до перевода птичники для содержания несушек.
Стандартный подход к профилактике этого заболевания – 3 – 4 иммунизации живой вакциной (шт. Н – 120) начиная с суточного возраста в качестве праймирования и применение инактивированной вакцины, обычно ассоциированной с другими вирусными антигенами, для достижения “бустерного” эффекта – на переводе во взрослое стадо. Респираторных признаков у взрослой птицы и повышенного отхода поголовья обычно не отмечается. Основанием для подозрений на участие в патологическом процессе вариантных штаммов вируса ИБК в вакцинированных стадах может служить прирост титров антител при исследовании в ИФА парных сывороток, отобранных в начале проявления клинических признаков или снижения яичной продуктивности и спустя 2 – 3 недели. В таких случаях пробы сывороток со значительным приростом антител целесообразно серотипировать в РН или РТГА. Проблема заключается в том, что можно выявить антитела к серотипу, вакцинные варианты которого не выпускаются или не зарегистрированы в РФ. К тому же в одном хозяйстве могут одновременно циркулировать штаммы вируса, относящиеся к разным серотипам.
В связи с этим для защиты от вариантных штаммов предлагается принятая во всем мире практика проведения иммунизации с интервалом 6 – 8 недель живой вакциной из штамма Н – 120 в течение всего продуктивного периода. Такая практика направлена на создание местной защиты в слизистых оболочках верхней части респираторного тракта и блокирование ворот инфекции для проникновения антигенно отличных штаммов вируса ИБК. Возможно также применение полиштаммной инактивированной вакцины, в состав которой включены антигены нескольких серотипов вируса.
Инфекционная бурсалъная болезнь. Эффективность контроля болезни всецело зависит от вирулентности циркулирующих штаммов вируса, и защита от высоковирулентных возбудителей на сегодняшний день обеспечивается живыми вакцинами из существующих “промежуточных ” и “горячих” штаммов, между которыми не существует принципиальной разницы. Своевременная разработка надежных отечественных средств специфической профилактики и ввод в действие Инструкции по профилактике и ликвидации заболевания птиц инфекционной бурсальной болезнью в 1995 году позволили добиться благополучия по данному заболеванию в промышленном птицеводстве. В настоящее время редкие случаи проявления болезни происходят при нарушении технологии вакцинации и при неоправданном использовании вакцин из “мягких” и “промежуточных” штаммов без учета реальной эпизоотической ситуации в хозяйстве. Постоянную угрозу для птицефабрик представляет птица индивидуального сектора, недостаточно охватываемая профилактической вакцинацией.
Время проведения первой вакцинации определяют по динамике снижения титров материнских антител, которые могут нейтрализовать вакцинный вирус. Ревакцинация через 7 – 10 дней всегда обеспечивает более надежную защиту по сравнению с однократной иммунизацией, т. к. уровень материнских антител у разных цыплят может сильно различаться. Это особенно важно учитывать при применении вакцин из “мягких” и “промежуточных” штаммов вируса.
Необходимо периодически осуществлять серологический контроль уровня титров материнских антител у цыплят и при наличии показаний корректировать схему иммунизации. Установлено, что местный поствакцинальный иммунитет развивается ранее, чем на 7 день после вакцинации и обеспечивает защиту цыплят при контрольном заражении.
Вакцинация инактивированным препаратом или отдельно, или в составе ассоциированных вакцин при переводе птицы во взрослое стадо направлена на повышение однородности титров материнских антител и продление сроков их циркуляции у цыплят.
В настоящее время на территории страны заболевание вызывают штаммы, относящиеся к классическим высоковирулентным. Об этом свидетельствуют результаты определения в ФГУ ВНИИЗЖ генетических характеристик полевых изолятов вируса.
В последние годы за рубежом стали выпускать иммуноком – плексные вакцины для применения и в суточном возрасте. Действие таких вакцин основано на том, что вакцинный вирус начинает размножаться “в самое нужное время” и поствакцинальный иммунитет формируется до того, как уровень трансовариальных антител снижается до критического.
Несмотря на определенную рациональность такого подхода, не следует менять существующие схемы надежной защиты поголовья от ИББ, поскольку в нашей стране имеются эффективные вакцины и проверенные многолетним опы-том способы их применения.
Пневмовирусная инфекция (ринотрахеит индеек). Пневмовирус (APV), или более точно птичий метапневмовирус, является причиной серьезной патологии у индеек (ринотрахеит, TRT) и “синдрома опухшей головы” у кур. В США это заболевание актуально только для индейководства, и там циркулируют пневмовирусы подтипа С, в то время как в Европе доминируют подтипы А и В, причем заболевание регистрируется у индеек, кур и фазанов. APV – инфекция у цыплят обычно осложняется микоплазмами, орнитобактериями. Не преуменьшая значения возбудителя как типично респираторного патогена, необходимо подчеркнуть, что птичий пневмовирус для кур не следует рассматривать как первичный и наиболее значимый этиологический фактор. Пневмовирусная инфекция в основном встречается в бройлерных хозяйствах, преимущественно у кур родительских стад. Антитела к вирусу обнаруживаются во многих хозяйствах, отмечается тенденция к увеличению их выявления у птицы яичного направления, причем обычно без клинического проявления.
Диагностика проводится серологическими исследованиями парных сывороток от больных и здоровых кур в ИФА и молекулярно – биологическими методами детекции генома вируса.
Специфическая профилактика за рубежом и в некоторых хозяйствах РФ проводится живыми и инактивированными вакцинами. Широко распространена вакцинация индюшат в суточном возрасте. Отмечена интерференция между вирусами ИБК и APV: первый угнетает репликацию второго в трахее. Это имеет принципиальное значение при составлении программ вакцинопрофилактики. Стратегия иммунизации сходна с иммунопрофилактикой ИБК.
В ряде хозяйств успешно применяется отечественная инактивированная вакцина против этой инфекции.
Инфекционный энцефаломиелит птиц (ИЭП). Вирус ИЭП распространен повсеместно. Заболевание у цыплят раннего возраста проявляется нервными признаками при вертикальной передаче вируса, у переболевших цыплят в более позднем возрасте отмечают поражение глаз (катаракту). Птица старше 2 – 3 – недельного возраста имеет возрастную резистентность к проявлению нервных признаков. У взрослых кур при контакте с вирусом может временно снижаться яичная продуктивность.
Диагностика заболевания без лабораторных исследований затруднительна, т. к. патологоанатомических изменений не отмечается. Исследования парных сывороток и сравнительные исследования сывороток от больных и здоровых цыплят в ИФА, а также обнаружение генома вируса молекулярно – биологическими методами в патматериале, полученном от больных цыплят (головной мозг и поджелудочная железа), позволяют установить диагноз. Для диагностики ИЭП как вертикальной инфекции необходимо отбирать и архивировать сыворотки крови от кур родительских стад при получении от них первых партий инкубационных яиц. Исследование этих сывороток одновременно с повторно отобранными при подозрении на инфекцию у цыплят значительно повышает диагностическую ценность результатов.
ИЭП профилактируется путем иммунизации ремонтного молодняка, выращиваемого для племенных целей, живой вакциной в 10 – 12 – недельном воз-расте, обычно методом выпаивания. Желательно вакцинировать также промышленную несушку в том же возрасте, т. к. не всегда полевой вирус иммунизирует птицу до начала продуктивного периода, и в тех случаях, когда полевой вирус проникает в стадо неимунных кур, возможны временные спады яичной продуктивности.
Вирусная анемия цыплят. Необходимость иммунизации определяется путем исследования сывороток крови в возрасте 10 – 12 недель. Обычно к этому времени все стада становятся серопозитивными после контакта с полевым вирусом, вследствие чего вертикальная передача вируса потомству исключена и вакцинация не требуется. Как инфекция с вертикальным путем передачи, болезнь проявляется клинически у цыплят до 3 – 4 – недельного возраста, полученных от несушек, не имеющих антител к возбудителю, при заражении их полевым вирусом во время продуктивного периода, обычно в начале яйцекладки. Заболевание наблюдается, как правило, на первых партиях выведенного молодняка и постепенно исчезает с возрастом родителей по мере их инаппарантного переболевания полевой инфекцией. Горизонтальный путь передачи возбудителя не приводит к клиническому проявлению болезни ввиду возрастной резистентности цыплят к заболеванию начиная с 3 – 4 – недельного возраста.
Рекомендуется проводить серомониторинг поголовья родительских стад по инфекционной анемии в возрасте от 70 – до 100 – суточного возраста для контроля иммунного статуса будущих родительских стад и при отсутствии антител к вирусу проводить вакцинацию.
Реовирусный теносиновит. Клиническое проявление в виде поражения суставов и хромоты чаще встречается у цыплят на птицефабриках, где регистрируется Микоплазма синовия. Серодиагностика, включающая исследование парных сывороток и сравнительное исследование сывороток от больных и здоровых цыплят в сочетании с молекулярно – биологическими методами детекции вируса в патматериале, помогают установить диагноз и определить самостоятельность данного этиологического фактора в патологии. При одновременном обнаружении в сыворотках антител к Микоплазме синовия вначале следует принять меры по антибиотикотерапии инфекционного синовита.
Специфическая профилактика заболевания проводится живыми и инактивированными вакцинами. Многие предприятия не имеют проблем с хромотой у птицы в процессе выращивания ремонтного молодняка и применяют только инактивированные вакцины для иммунизации родительских стад. Такая вакцинация направлена на продление сроков циркуляции материнских антител у потомства для предотвращения раннего заражения цыплят, которое может приводить к проявлению синдрома малабсорбции и задержки роста. Имеются сообщения о появлении в Европе и США нового класса птичьих реовирусов, вызывающих, помимо артритов и теносиновитов, нервные признаки у птиц и отличных от известных вирусов S1133, 1733. Это обстоятельство может потребовать в будущем разработки адекватных вакцин.
Инфекционный ларинготрахеит (ИЛТ). Диагностика этого заболевания обычно не вызывает затруднений, т.к. можно установить характерные клинические признаки и патогномоничные изменения при вскрытии павшей птицы. Вирус способен к длительной латентной персистенции в тригеминальных ганглиях и возврату в респираторные ткани после стрессов. Птицы, реэкскретирующие вирус, могут не иметь клинических признаков заболевания и быть при этом источником инфекции. Поэтому хозяйствам чрезвычайно сложно полностью освободиться от этого коварного возбудителя, который активизируется при воздействии на птицу различных стресс – факторов.
По результатам серологических исследований (ИФА) отмечается тенденция к проявлению заболевания в более раннем возрасте, особенно у бройлеров. По всей видимости, это связано с повышенными требованиями современных высокопродуктивных кроссов к обеспечению технологических параметров кормления и содержания, прежде всего воздухообмена. В настоящее время в диагностике, наряду с РДП и изоляцией возбудителя в куриных эмбрионах, успешно применяются молекулярно – биологические методы.
Стратегию вакцинопрофилактики упрощает то обстоятельство, что вирус имеет один серотип. Живые вакцинные вирусы, по – видимому, также могут после латентного периода реэкскретироваться и вызывать болезнь, ревертируя к вирулентной форме. За рубежом проводятся исследования по разработке маркерных делетированных вакцин, у которых отсутствует способность к латенции, и специфического ELISA – теста для дифференциации антител на вакцинный и полевой вирусы.
Для специфической профилактики ИЛТ имеются надежные отечественные вакцины. К вакцинации желательно приступать в тех случаях, когда исчерпаны меры консервативного воздействия (устранение стресс – факторов, аэрозольные обработки птицы йодсодержащими препаратами), и, несмотря на это, заболевание прогрессирует. Эмбриональные вакцины обладают более выраженным протективным потенциалом по сравнению с культуральными. Поствакцинальная реакция в виде незначительных респираторных расстройств на 4 – 5 день после вакцинации свидетельствует об успешно проведенной иммунизации.
Микоплазмозы. Наибольшую опасность для кур представляют респираторный микоплазмоз, вызываемый Микоплазмой галлисептикум, и инфекционный синовит, вызываемый Микоплазмой синовия. Хотя микроорганизм во внешней среде сохраняется недолго, он способен персистировать в организме птиц, и избавиться от него можно, только временно полностью избавившись от поголовья в хозяйстве.
Основной метод контроля микоплазмоза – система организаци¬онных, диагностических и ветеринарно – санитарных мероприятий, направленных на поддержание племенными стадами статуса свободных от Mg и Ms. В странах с развитым птицеводством эта система опирается на базовые рекомендации МЭБ и национальные программы – NPIP (Национальный план улучшения птицеводства) в США и Директиву 90/539 ЕС в Европе. В рутинных исследованиях используется реакции агглютинации. В случае выявления серопозитивных птиц в стаде с подтверждением при повторном тестировании и дополнительных тестах (РА в разведениях, РТГА, ИФА, ПЦР и культивирование) стадо прекращает функционировать как племенное.
Лечение птицы антибиотиками может снизить, но не устранить полностью трансовариальную передачу инфекции потомству. Возможно применение инактивированных вакцин в родительских стадах с целью снижения трансовариальной передачи возбудителя в сочетании с антибиотикотерапией. Эффективность вакцинации и лечебно – профилактических мероприятий и выбор сроков их проведения можно оценивать по результатам серологических исследований в ИФА и реакции агглютинации. В настоящее время доступны надежные отечественные диагностикумы для постановки данных тестов и инактивированные вакцины против респираторного микоплазмоза птиц.
Инфекционный синовит зачастую протекает в ассоциации со стрептококковой инфекцией (Enterococcus), вызывая патологию, именуемую амилоидной артропатией. Опыт некоторых птицефабрик показывает, что наиболее эффективно в этих случаях инъекционное применение антибиотиков, в частности гентамицина.
Аденовирусные болезни птиц. Из аденовирусных инфекций опасность для промышленного птицеводства представляют два заболевания – синдром снижения яйценоскости – 76 (ССЯ – 76) и синдром гидроперикардита кур (СГПК).
Заболевание, проявляющееся депигментацией скорлупы и “литьем” яиц, чаще регистрировалось у коричневых кроссов птицы яичного направления. Плановая вакцинация за месяц до начала яйцекладки надежно защищает птицу от данного заболевания. Постоянную угрозу заражения представляет водоплавающая домашняя и дикая птица, являющаяся природным резервуаром возбудителя.
Лабораторная диагностика СГПК, характеризующегося на вскрытии поражением печени и скоплением транссудата в сердечной сорочке, в обязательном порядке предусматривает постановку био¬пробы на СПФ – цыплятах, выделение и идентификацию возбудителя вирусологическими и молекулярно – биологическими методами. Для исследований следует отбирать печень и почки и доставлять их в замороженном состоянии без применения консервантов. Специфическая профилактика заболевания проводится инактивированной вакциной. Цыплят вакцинируют в возрасте 5 – 10 суток. Птицу родительских стад иммунизируют за 1 месяц до начала яйцекладки.
Общей особенностью этих двух различных аденовирусных заболеваний является преобладание трансовариального пути передачи вируса и пожизненное вирусоносительство у переболевшей птицы.
Бактериальные инфекции. Известно, что тенденция в Европе к сокращению использования фармацевтических средств и запрещение применения антибиотиков – стимуляторов роста вызвала рост проявлений некротического энтерита и других кишечных инфекций в птицеводстве. Альтернативой запрету на применение антибиотиков и химиотерапевтических средств является повышение ветеринарной защиты предприятий и санитарная культура.
В контексте понятия “микробная усталость птичников” легко объяснить тот факт, что птицефабрики, временно прекратившие производственную деятельность и таким образом подвергнутые вынужденной санации, при возобновлении производства достигают поразительных результатов. В условиях непрерывной работы значение профилактических перерывов и санации птичников чрезвычайно велико, а применение антибиотиков неизбежно. Чаще всего в хозяйствах наблюдается развитие бактериальных инфекций в соответствии с условной схемой:
стресс – вирус (провокатор) →
микоплазма (ворота открыты) →
секундарная микрофлора (массовое проявление признаков колибак-териоза)
Если ветврач успешно контролирует первую часть этого сценария активной борьбой с технологическими нарушениями и грамотно составленной схемой вакцинации, то вторая часть сценария может не получить продолжения и не вызвать серьезных последствий.
